Patrones electroforéticos de hemoproteínas salivares (nitroforinas) de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae)
Palabras clave:
Rhodnius, Triatominae, saliva, Colombia
Resumen
Introducción. La electroforesis de hemeproteínas salivares en geles de almidón es una técnica de reciente aplicación para diferenciar especies del género Rhodnius que poseen gran similaridad fenotípica o para diferenciar subpoblaciones de la misma especie, separadas geográficamente. De las 15 especies de Rhodnius descritas en latinoamérica, por lo menos ocho han sido reportadas en el territorio colombiano.Objetivo. Utilizar la electroforesis de hemeproteínas salivares para diferenciar R. prolixus de R. colombiensis, dos especies con similaridad fenotípica cuyos ciclos doméstico y selvático se superponen en la cuenca alta del río Magdalena en la región Central de Colombia.
Materiales y Métodos. El contenido de las glándulas salivares de cada insecto se sometió a electroforesis en gel de almidón utilizando buffer de glicina y revelado de las bandas con 3,3',5,5'-tetrametilbenzidina. Los patrones de bandeo fueron registrados fotográficamente.
Resultados. Usando esta técnica se observaron los perfiles electroforéticos de las hemeproteínas salivares de R. prolixus y R. colombiensis los cuales permitieron su inequívoca diferenciación.
Conclusión. Estos resultados demuestran la utilidad de la técnica para la diferenciación entre R. prolixus y R. colombiensis en adición a métodos morfométricos y moleculares previamente utilizados para diferenciar estas dos especies.
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Referencias bibliográficas
1. Stark KR, James AA. The salivary glands of disease vectors. En: Beaty BJ, Marquardt WC, editors. The biology of disease vectors. Colorado: Colorado University Press; 1996. p. 333-48.
2. Ribeiro JM. Role of saliva in blood feeding by arthropods. Annu Rev Entomol 1987;32:463-78.
3. Law JH, Ribeiro JM, Wells MA. Biochemical insights derived from diversity in insects. Annu Rev Biochem 1992;61:87-111.
4. Montfort WR, Weichsel A, Andersen JF. Nitrophorins and related antihemostatic lipocalins from Rhodnius prolixus and other blood-sucking arthropods. Biochim Biophys Acta 2000;1482:110-8.
5. Francischetti IM, Ribeiro JM, Champagne D, Andersen J. Purification, cloning, expression and mechanism of action of a novel platelet aggregation inhibitor from salivary gland of the blood-sucking bug, Rhodnius prolixus. J Biol Chem 2000;275:12639-50.
6. Sarkis JJ, Guimarães JA, Ribeiro JM. Salivary apyrase of Rhodnius prolixus. Kinetics and purification. Biochem J 1986;233:885-91.
7. Champagne DE, Nussenzveig RH, Ribeiro JM. Purification, partial characterization and cloning of nitric oxide-carrying hemeproteins (nitrophorins) from salivary glands of the blood-sucking insect Rhodnius prolixus. J Biol Chem 1995;270:8691-5.
8. Andersen JF, Montfort WR. The crystal structure of Nitrophorin 2. A trifunctional antihemostatic protein from the saliva of Rhodnius prolixus. J Biol Chem 2000;275:30496-503.
9. Valenzuela JG, Walker FA, Ribeiro JM. A salivary nitrophorin (nitric-oxide-carrying hemoprotein) in the bedbug Cimex lectularius. J Exp Biol 1995;198:1519-26.
10. Valenzuela JG, Ribeiro JM. Purification and cloning of the salivary nitrophorin from the hemipteran Cimex lectularius. J Exp Biol 1998;201:2659-64.
11. Ribeiro JM, Hazzard JM, Nussenzveig RH, Champagne DE, Walker FA. Reversible binding of nitric oxide by a salivary heme protein from a bloodsucking insect. Science 1993;260:539-41.
12. Ribeiro JM, Walker FA. High affinity histamine-binding and antihistaminic activity of the salivary nitric oxidecarrying heme protein (nitrophorin) of Rhodnius prolixus. J Exp Med 1994;180:2251-7.
13. Ascenzi P, Nardini M, Bolognesi M, Montfort WR. Nitrophorins. Lipocalin-based heme proteins transporting nitric oxide. Biochem Mol Biol Educ 2002;30:68-71.
14. Walker FA. Nitric oxide interaction with insect nitrophorins and thoughts on the electron configuration of the {FeNO}6 complex. J Inorg Biochem 2005;99:216-36.
15. Moncada S, Radomski MW, Palmer RM. Endotheliumderived relaxing factor: identification as nitric oxide and role in the control of vascular tone and platelet function. Biochem Pharmacol 1988;37:2495-501.
16. Ribeiro JM, Schneider M, Guimarães JA. Purification and characterization of prolixin S (nitrophorin 2), the salivary anticoagulant of the blood-sucking bug Rhodnius prolixus. Biochem J 1995;308:243-9.
17. Moreira FM, Coelho HS, Zingali RB, Oliveira PL, Masuda H. Changes in salivary nitrophorin profile during the life cycle of the blood-sucking bug Rhodnius prolixus. Insect Biochem Mol Biol 2003;33:23-8.
18. Lent H, Wygodzinsky P. Revision of Triatominae (Hemiptera, Reduviidae), and their significance as vectors of Chagas' disease. Bull Am Mus Nat Hist 1979;163:123-520.
19. Carcavallo R, Galíndez I, Jurberg J, Lent H. Atlas of Chagas' disease vectors in the Americas. Río de Janeiro: Editora Fiocruz; 1998. p.53-72.
20. Moreno J, Galvão C, Jurberg J. Rhodnius colombiensis sp. n. da Colômbia com quadros comparativos entre estructuras fálicas do género Rhodnius Stal. 1859 (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae). Entomol Vect 1999;6:601-17.
21. Harry M, Galíndez I, Cariou ML. Isoenzyme variability and differentiation between Rhodnius prolixus, R. robustus and R. pictipes, vectors of Chagas disease in Venezuela. Med Vet Entomol 1992;6:37-43.
22. Chavez T, Moreno J, Dujardin JP. Isoenzyme electrophoresis of Rhodnius species: a phenetic approach to relationships within the genus. Ann Trop Med Parasitol 1999;93:299-307.
23. Dujardin JP, Chavez T, Moreno JM, Machane M, Noireau F, Schofield CJ. Comparison of izoenzyme electrophoresis and morphometric analysis for phylogenetic reconstruction of the Rhodniini (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). J Med Entomol 1999;36:653-9.
24. Catalá S, Schofield C. Antennal sensilla of Rhodnius. J Morphol 1994;219:193-203.
25. Stothard JR, Yamamoto Y, Cherchi A, Garcia AL, Valente SA, Schofield CJ, et al. A preliminary survey of mitochondrial sequence variation in Triatominae (Hemiptera: Reduviidae) using polymerase chain reaction-based single strand conformational polymorphism (SSCP) analysis and direct sequencing. Bull Entomol Res 1998;88:553-60.
26. Lyman DF, Monteiro FA, Escalante AA, Cordon-Rosales C, Wesson DM, Dujardin JP, et al. Mitochondrial DNA sequence variation among triatomine vectors of Chagas disease. Am J Trop Med Hyg 1999;60:377-86.
27. Jurberg J. Uma abordagem filogenética entre os Triatomineos baseada nas estruturas fálicas. In: Schofield CJ, Dujardin JP, Jurberg J, editors. Proceedings of the International Workshop on
Population Biology and Control of Triatominae, Santo Domingo de los Colorados, Ecuador. Mexico D.F: INDRE; 1996. p.45-50.
28. Soares RP, Gontijo NF, Romanha AJ, Diotaiuti L, Pereira MH. Salivary heme proteins distinguish Rhodnius prolixus from Rhodnius robustus (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). Acta Trop 1998;71:285-91.
29. Soares RP, Sant'Anna MR, Gontijo NF, Romanha AJ, Diotaiuti L, Pereira MH. Identification of morphologically similar Rhodnius species (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) by electrophoresis of salivary heme proteins. Am J Trop Med Hyg 2000;62:157-61.
30. WHO. Control of Chagas' disease. Geneve: World Health Organ Tech Rep Ser. 811; 1991. p.95.
31. Schofield CJ, Dujardin JP. Theories on the evolution of Rhodnius. Actualidades Biológicas 1999;21:183-97.
32. Jaramillo C, Montaña MF, Castro LR, Vallejo GA, Guhl F. Differentiation and genetic analysis of Rhodnius prolixus and Rhodnius colombiensis by rDNA and RAPD amplification. Mem Inst Oswaldo Cruz 2001;96:1043-8.
2. Ribeiro JM. Role of saliva in blood feeding by arthropods. Annu Rev Entomol 1987;32:463-78.
3. Law JH, Ribeiro JM, Wells MA. Biochemical insights derived from diversity in insects. Annu Rev Biochem 1992;61:87-111.
4. Montfort WR, Weichsel A, Andersen JF. Nitrophorins and related antihemostatic lipocalins from Rhodnius prolixus and other blood-sucking arthropods. Biochim Biophys Acta 2000;1482:110-8.
5. Francischetti IM, Ribeiro JM, Champagne D, Andersen J. Purification, cloning, expression and mechanism of action of a novel platelet aggregation inhibitor from salivary gland of the blood-sucking bug, Rhodnius prolixus. J Biol Chem 2000;275:12639-50.
6. Sarkis JJ, Guimarães JA, Ribeiro JM. Salivary apyrase of Rhodnius prolixus. Kinetics and purification. Biochem J 1986;233:885-91.
7. Champagne DE, Nussenzveig RH, Ribeiro JM. Purification, partial characterization and cloning of nitric oxide-carrying hemeproteins (nitrophorins) from salivary glands of the blood-sucking insect Rhodnius prolixus. J Biol Chem 1995;270:8691-5.
8. Andersen JF, Montfort WR. The crystal structure of Nitrophorin 2. A trifunctional antihemostatic protein from the saliva of Rhodnius prolixus. J Biol Chem 2000;275:30496-503.
9. Valenzuela JG, Walker FA, Ribeiro JM. A salivary nitrophorin (nitric-oxide-carrying hemoprotein) in the bedbug Cimex lectularius. J Exp Biol 1995;198:1519-26.
10. Valenzuela JG, Ribeiro JM. Purification and cloning of the salivary nitrophorin from the hemipteran Cimex lectularius. J Exp Biol 1998;201:2659-64.
11. Ribeiro JM, Hazzard JM, Nussenzveig RH, Champagne DE, Walker FA. Reversible binding of nitric oxide by a salivary heme protein from a bloodsucking insect. Science 1993;260:539-41.
12. Ribeiro JM, Walker FA. High affinity histamine-binding and antihistaminic activity of the salivary nitric oxidecarrying heme protein (nitrophorin) of Rhodnius prolixus. J Exp Med 1994;180:2251-7.
13. Ascenzi P, Nardini M, Bolognesi M, Montfort WR. Nitrophorins. Lipocalin-based heme proteins transporting nitric oxide. Biochem Mol Biol Educ 2002;30:68-71.
14. Walker FA. Nitric oxide interaction with insect nitrophorins and thoughts on the electron configuration of the {FeNO}6 complex. J Inorg Biochem 2005;99:216-36.
15. Moncada S, Radomski MW, Palmer RM. Endotheliumderived relaxing factor: identification as nitric oxide and role in the control of vascular tone and platelet function. Biochem Pharmacol 1988;37:2495-501.
16. Ribeiro JM, Schneider M, Guimarães JA. Purification and characterization of prolixin S (nitrophorin 2), the salivary anticoagulant of the blood-sucking bug Rhodnius prolixus. Biochem J 1995;308:243-9.
17. Moreira FM, Coelho HS, Zingali RB, Oliveira PL, Masuda H. Changes in salivary nitrophorin profile during the life cycle of the blood-sucking bug Rhodnius prolixus. Insect Biochem Mol Biol 2003;33:23-8.
18. Lent H, Wygodzinsky P. Revision of Triatominae (Hemiptera, Reduviidae), and their significance as vectors of Chagas' disease. Bull Am Mus Nat Hist 1979;163:123-520.
19. Carcavallo R, Galíndez I, Jurberg J, Lent H. Atlas of Chagas' disease vectors in the Americas. Río de Janeiro: Editora Fiocruz; 1998. p.53-72.
20. Moreno J, Galvão C, Jurberg J. Rhodnius colombiensis sp. n. da Colômbia com quadros comparativos entre estructuras fálicas do género Rhodnius Stal. 1859 (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae). Entomol Vect 1999;6:601-17.
21. Harry M, Galíndez I, Cariou ML. Isoenzyme variability and differentiation between Rhodnius prolixus, R. robustus and R. pictipes, vectors of Chagas disease in Venezuela. Med Vet Entomol 1992;6:37-43.
22. Chavez T, Moreno J, Dujardin JP. Isoenzyme electrophoresis of Rhodnius species: a phenetic approach to relationships within the genus. Ann Trop Med Parasitol 1999;93:299-307.
23. Dujardin JP, Chavez T, Moreno JM, Machane M, Noireau F, Schofield CJ. Comparison of izoenzyme electrophoresis and morphometric analysis for phylogenetic reconstruction of the Rhodniini (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). J Med Entomol 1999;36:653-9.
24. Catalá S, Schofield C. Antennal sensilla of Rhodnius. J Morphol 1994;219:193-203.
25. Stothard JR, Yamamoto Y, Cherchi A, Garcia AL, Valente SA, Schofield CJ, et al. A preliminary survey of mitochondrial sequence variation in Triatominae (Hemiptera: Reduviidae) using polymerase chain reaction-based single strand conformational polymorphism (SSCP) analysis and direct sequencing. Bull Entomol Res 1998;88:553-60.
26. Lyman DF, Monteiro FA, Escalante AA, Cordon-Rosales C, Wesson DM, Dujardin JP, et al. Mitochondrial DNA sequence variation among triatomine vectors of Chagas disease. Am J Trop Med Hyg 1999;60:377-86.
27. Jurberg J. Uma abordagem filogenética entre os Triatomineos baseada nas estruturas fálicas. In: Schofield CJ, Dujardin JP, Jurberg J, editors. Proceedings of the International Workshop on
Population Biology and Control of Triatominae, Santo Domingo de los Colorados, Ecuador. Mexico D.F: INDRE; 1996. p.45-50.
28. Soares RP, Gontijo NF, Romanha AJ, Diotaiuti L, Pereira MH. Salivary heme proteins distinguish Rhodnius prolixus from Rhodnius robustus (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). Acta Trop 1998;71:285-91.
29. Soares RP, Sant'Anna MR, Gontijo NF, Romanha AJ, Diotaiuti L, Pereira MH. Identification of morphologically similar Rhodnius species (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) by electrophoresis of salivary heme proteins. Am J Trop Med Hyg 2000;62:157-61.
30. WHO. Control of Chagas' disease. Geneve: World Health Organ Tech Rep Ser. 811; 1991. p.95.
31. Schofield CJ, Dujardin JP. Theories on the evolution of Rhodnius. Actualidades Biológicas 1999;21:183-97.
32. Jaramillo C, Montaña MF, Castro LR, Vallejo GA, Guhl F. Differentiation and genetic analysis of Rhodnius prolixus and Rhodnius colombiensis by rDNA and RAPD amplification. Mem Inst Oswaldo Cruz 2001;96:1043-8.
Cómo citar
1.
Arévalo A, Carranza JC, Guhl F, Vallejo GA. Patrones electroforéticos de hemoproteínas salivares (nitroforinas) de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae). Biomed. [Internet]. 1 de enero de 2007 [citado 4 de abril de 2025];27(1esp):137-42. Disponible en: https://revistabiomedicaorg.biteca.online/index.php/biomedica/article/view/257
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