Primer aislamiento de Encephalitozoon intestinalis a partir de muestra de materia fecal de un paciente colombiano con sida
Palabras clave:
Encephalitozoon, microsporidiosis, síndrome de inmunodeficiencia adquirida, aislamiento de pacientes, células cultivadas, heces
Resumen
Introducción. Los microsporidios son agentes de infecciones oportunistas en pacientes con sida y con trasplantes, principalmente. Enterocytozoon bieneusi y Encephalitozoon intestinalis son los más frecuentes, asociados con infecciones entéricas. Los cultivos celulares han contribuido al conocimiento de los microsporidios. En Colombia no se han obtenido aislamientos provenientes de pacientes con microsporidiosis y, por consiguiente, no existen cepas autóctonas de los mismos. Objetivo. Establecer el cultivo celular de microsporidios intestinales a partir de materia fecal de pacientes parasitados. Materiales y métodos. Se realizó concentración agua-éter de la materia fecal positiva para microsporidios y el sedimento resultante se trató con una mezcla de antibióticos y antimicóticos durante 18 horas a 37 oC. Se inocularon células Vero previamente cultivadas en placas de 24 pozos y en medio RPMI con suplemento de suero bovino fetal al 10% y antibióticos, con las esporas concentradas. Los cultivos se mantuvieron a 37 oC al 5% de CO2. Se cambió de medio cada dos días y se evaluó la presencia de esporas en los sobrenadantes mediante Gram-cromótropo rápido en caliente. Resultados. En la segunda semana después de la infección, se encontraron esporas de microsporidios con morfología y coloración características. Mediante PCR se determinó que el microsporidio encontrado correspondía a la especie E. intestinalis. Conclusión. Se estableció el cultivo in vitro de microsporidios de materia fecal. Este protocolo es importante para la obtención y el mantenimiento de cepas autóctonas en Colombia, y contribuirá a las investigaciones de aspectos bioquímicos, inmunológicos y epidemiológicos de dichas cepas.Descargas
Referencias bibliográficas
1. Sprague VV, Becnel JJ. Note on the name-author-date combination for the taxon Microsporidies Balbiani, 1882, when ranked as Phylum. J Invertebr Pathol. 1998;71:91-4.
2. Franzen C, Müller A. Microsporidiosis: human diseases and diagnosis. Microbes Infect. 2001;3:389-400.
3. Mathis A, Weber R, Deplazes P. Zoonotic potential of the microsporidia. Clin Microbiol Rev. 2005;18:423-45.
4. Franzen C, Müller A. Molecular techniques for detection, species differentiation, and phylogenetic analysis of microsporidia. Clin Microbiol Rev. 1999;12:243-85.
5. Wasson K, Peper RL. Mammalian microsporidiosis. Vet Pathol. 2000;37:113-28.
6. Didier S. Microsporidiosis: An emerging and opportunistic infection in humans and animals. Acta Trop. 2005;94:61-76.
7. Kotler DP, Orenstein JM. Prevalence of intestinal microsporidiosis in HIV-infected individuals referred for gastroenterological evaluation. Am J Gastroenterol. 1994;8:1998-2002.
8. Gamboa Domínguez A, Bencosme Vinas C, Kato Maeda M. Microsporidiasis in AIDS patients with chronic diarrhea. Experiences at the National Institute of Nutrition "Salvador Zubriran". Rev Gastroenterol Mex. 1999;64: 70-4.
9. Brasil P, de Lima DB, de Paiva DD, Lobo MS, Sodre FC, Silva SP, et al. Clinical and diagnostic aspects of intestinal microsporidiosis in HIV-infected patients with chronic diarrhea in Rio de Janeiro, Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2000;42:299-304.
10. Flórez AC, García DA, Moncada LI, Beltrán M. Prevalencia de microsporidios y otros parásitos intestinales en pacientes con infección por VIH, Bogotá, 2001. Biomédica. 2003;23:274-82.
11. Botero J, Montoya MN, Agudelo S, Vanegas AL, Diaz A, Bornay FJ, et al. Frecuencia de microsporidiosis intestinal en pacientes VIH positivos determinada mediante las técnicas de quick-hot gram chromotropo y PCR. Biomédica. 2004;24:375-84.
12. Visvesvara GS. Microsporidia: in vitro cultivation of microsporidia of clinical importance. Clin Microbiol Rev. 2002;15:401-13.
13. Del Aguila C, Croppo GP, Moura H, da silva AJ, Leitch GJ, Moss DM, et al. Ultrastructure, immunofluorescence, western blot, and PCR analysis of eight isolates of Encephalitozoon (septata) intestinalis established in culture from sputum and urine samples and duodenal aspirates of five patients with AIDS. J Clin Microbiol. 1998;36:1201-8.
14. van Gool T, Canning EU, Gilis H, van den Bergh Weerman MA, Eeftinck Schattenkerk JK, Dankert J. Septata intestinalis frequently isolated from stool of AIDS patients with a new cultivation method. Parasitology. 1994;109:281-9.
15. Visvesvara GS, da Silva AJ, Croppo GP, Pieniazek NJ, Leitch GJ, Ferguson D, et al. In vitro culture and serologic and molecular identification of Septata intestinalis isolated from urine of a patient with AIDS. J Clin Microbiol. 1995;33:930-6.
16. da Silva AJ, Schwartz DA, Visvesvara GS, de Moura H, Slemenda SB, Pieniazek NJ. Sensitive PCR diagnosis of infections by Enterocytozoon bieneusi (microsporidia) using primers based on the region coding for small-subunit rRNA. J Clin Microbiol. 1996;34:986-7.
2. Franzen C, Müller A. Microsporidiosis: human diseases and diagnosis. Microbes Infect. 2001;3:389-400.
3. Mathis A, Weber R, Deplazes P. Zoonotic potential of the microsporidia. Clin Microbiol Rev. 2005;18:423-45.
4. Franzen C, Müller A. Molecular techniques for detection, species differentiation, and phylogenetic analysis of microsporidia. Clin Microbiol Rev. 1999;12:243-85.
5. Wasson K, Peper RL. Mammalian microsporidiosis. Vet Pathol. 2000;37:113-28.
6. Didier S. Microsporidiosis: An emerging and opportunistic infection in humans and animals. Acta Trop. 2005;94:61-76.
7. Kotler DP, Orenstein JM. Prevalence of intestinal microsporidiosis in HIV-infected individuals referred for gastroenterological evaluation. Am J Gastroenterol. 1994;8:1998-2002.
8. Gamboa Domínguez A, Bencosme Vinas C, Kato Maeda M. Microsporidiasis in AIDS patients with chronic diarrhea. Experiences at the National Institute of Nutrition "Salvador Zubriran". Rev Gastroenterol Mex. 1999;64: 70-4.
9. Brasil P, de Lima DB, de Paiva DD, Lobo MS, Sodre FC, Silva SP, et al. Clinical and diagnostic aspects of intestinal microsporidiosis in HIV-infected patients with chronic diarrhea in Rio de Janeiro, Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2000;42:299-304.
10. Flórez AC, García DA, Moncada LI, Beltrán M. Prevalencia de microsporidios y otros parásitos intestinales en pacientes con infección por VIH, Bogotá, 2001. Biomédica. 2003;23:274-82.
11. Botero J, Montoya MN, Agudelo S, Vanegas AL, Diaz A, Bornay FJ, et al. Frecuencia de microsporidiosis intestinal en pacientes VIH positivos determinada mediante las técnicas de quick-hot gram chromotropo y PCR. Biomédica. 2004;24:375-84.
12. Visvesvara GS. Microsporidia: in vitro cultivation of microsporidia of clinical importance. Clin Microbiol Rev. 2002;15:401-13.
13. Del Aguila C, Croppo GP, Moura H, da silva AJ, Leitch GJ, Moss DM, et al. Ultrastructure, immunofluorescence, western blot, and PCR analysis of eight isolates of Encephalitozoon (septata) intestinalis established in culture from sputum and urine samples and duodenal aspirates of five patients with AIDS. J Clin Microbiol. 1998;36:1201-8.
14. van Gool T, Canning EU, Gilis H, van den Bergh Weerman MA, Eeftinck Schattenkerk JK, Dankert J. Septata intestinalis frequently isolated from stool of AIDS patients with a new cultivation method. Parasitology. 1994;109:281-9.
15. Visvesvara GS, da Silva AJ, Croppo GP, Pieniazek NJ, Leitch GJ, Ferguson D, et al. In vitro culture and serologic and molecular identification of Septata intestinalis isolated from urine of a patient with AIDS. J Clin Microbiol. 1995;33:930-6.
16. da Silva AJ, Schwartz DA, Visvesvara GS, de Moura H, Slemenda SB, Pieniazek NJ. Sensitive PCR diagnosis of infections by Enterocytozoon bieneusi (microsporidia) using primers based on the region coding for small-subunit rRNA. J Clin Microbiol. 1996;34:986-7.
Cómo citar
1.
Galván AL, Bedoya K, Montoya MN, Botero J. Primer aislamiento de Encephalitozoon intestinalis a partir de muestra de materia fecal de un paciente colombiano con sida. Biomed. [Internet]. 1 de septiembre de 2008 [citado 6 de abril de 2025];28(3):441-7. Disponible en: https://revistabiomedicaorg.biteca.online/index.php/biomedica/article/view/83
Algunos artículos similares:
- Jorge Andrés Cuellar, Alejandro Hernández, Enrique Villegas, Jorge Enrique Gómez, Eficiencia de cultivo in vitro de Toxoplasma gondii en las líneas celulares THP1 y Vero , Biomédica: Vol. 32 Núm. 3 (2012)
- Yiby Forero, Gina E. Morales, Edgar Benítez, Comparación de dos metodologías utilizadas para la determinación del síndrome metabólico en población adulta , Biomédica: Vol. 33 Núm. 2 (2013)
- Carolina Guerra, Carlos Santiago Uribe, Alejandro Guerra, Olga H. Hernández, Encefalitis de Bickerstaff: informe de caso y revisión de la literatura , Biomédica: Vol. 33 Núm. 4 (2013)
- Sergio Velásquez, Juan D. Matute, Laura Y. Gámez, Luis E. Enríquez, Iván D. Gómez, Fabiola Toro, Martha L. Valencia, Gisela De La Rosa, Pablo J. Patiño, Fabián A. Jaimes, Caracterización de la expresión de nCD64 en neutrófilos y de los niveles de s-TREM-1 y HMGB-1 en pacientes con sospecha de infección admitidos en el departamento de emergencias , Biomédica: Vol. 33 Núm. 4 (2013)
- Ana Luz Galván, Sonia del Pilar Agudelo, Juan Gonzalo Restrepo, Fabiola Toro, Luisa Alejandra Galviz, Jorge Botero, Efecto de la ciclosporina A en ratones C57BL/6 infectados con Encephalitozoon intestinalis. , Biomédica: Vol. 26 Núm. 1 (2006)
- Jorge L. Martínez-Cajas, Héctor F. Mueses-Marín, Pablo Galindo-Orrego, Juan F. Agudelo, Jaime Galindo-Quintero, Resistencia a fármacos en pacientes en tratamiento antirretroviral, Cali, Colombia, 2008-2010 , Biomédica: Vol. 33 Núm. 4 (2013)
- Mayra Alejandra Machuca, Clara Isabel González, Luis Miguel Sosa, Staphylococcus aureus resistente a meticilina causante de infecciones comunitarias y de infecciones asociadas a la atención en salud en pacientes pediátricos del Hospital Universitario de Santander , Biomédica: Vol. 34 (2014): Abril, Suplemento 1, Resistencia bacteriana
- Rodrigo Adán Medina-Pinto, Roger Iván Rodríguez-Vivas, Manuel Emilio Bolio-González, Nematodos intestinales de perros en parques públicos de Yucatán, México , Biomédica: Vol. 38 Núm. 1 (2018)
- Nathaly Garzón-Orjuela, Javier Eslava-Schmalbach, Nathalie Ospina, Efectividad de las intervenciones para la transferencia y apropiación social del conocimiento de las guías de práctica clínica para pacientes y comunidad, una revisión sistemática , Biomédica: Vol. 38 Núm. 2 (2018)
- Elkin Beltrán , Diana Díaz , Cindy Díaz , Luis Zarco , Calidad de vida en pacientes con esclerosis múltiple y sus cuidadores en Colombia: un año de seguimiento , Biomédica: Vol. 40 Núm. 1 (2020)
Publicado
2008-09-01
Número
Sección
Nota técnica
Estadísticas de artículo | |
---|---|
Vistas de resúmenes | 126 |
Vistas de PDF | 132 |
Descargas de PDF | 132 |
Vistas de HTML | 0 |
Otras vistas | 0 |