Niveles séricos de adipocitocinas y resistencia a la insulina en el primer trimestre de gestación en adolescentes y su relación con el peso del recién nacido
Resumen
Introducción. Poco se ha estudiado en adolescentes gestantes la fisiología del embarazo con respecto al comportamiento de las adipocitocinas y según el modelo homeostático HOMA-IR (Homeostatic Model Assessment for Insulin Resistance) para evaluar la resistencia a la insulina y su relación con el peso del recién nacido.
Objetivo. Determinar posibles correlaciones entre las adipocitocinas leptina y adiponectina, y el HOMA-IR en adolescentes gestantes de 14 a 17 años, el índice de masa corporal en el primer trimestre de gestación y el peso del recién nacido.
Materiales y métodos. En las semanas 11 a 14 de gestación, se midieron las variables bioquímicas de la leptina y la adiponectina, así como de la glucemia y la insulina, y se calculó el puntaje del HOMA-IR. Se obtuvieron los datos sobre las variables antropométricas de las madres y los recién nacidos. En el análisis estadístico se calcularon la correlación de Pearson y el valor de p.
Resultados. Se evidenció una correlación positiva entre los niveles séricos de la leptina y el HOMA-IR en el primer trimestre de gestación (r=0,5; p≤0,000) y una negativa entre la adiponectina y el HOMAIR (r=-0,4; p=0,017), además de correlaciones positivas del índice de masa corporal con la leptina, la insulina y el HOMA-IR (r=0,83 y p<0,000; r=0,56 y p=<0.000, y r=0,54 y p≤0,000, respectivamente). En madres adolescentes sin obesidad ni antecedentes de dislipidemia, se registró una correlación positiva entre la evaluación HOMA-IR y el peso neonatal (r=0,43; p=0,012).
Conclusiones. La leptina y el HOMA-IR presentaron una correlación positiva, y la adiponectina y el HOMA-IR, una negativa. La leptina y el HOMA-IR se correlacionaron de manera positiva con el IMC. El HOMA-IR se correlacionó con el peso de los recién nacidos de adolescentes sin obesidad ni dislipidemia.
Descargas
Referencias bibliográficas
Colombiana de Salud, S.A. Guía de atención: Morbilidad materna. Manejo de la obesidad materna antes, durante y después de la gestación. Junio de 2013. 2013. Fecha de consulta: 25 de marzo de 2017. Disponible en: http://www.colombianadesalud.org.co/GUIAS_MATERNO_INFANTIL/OBESIDAD%20Y%20EMBARAZO.pdf
Escudero VL, Parra SB, Herrera MJ, Restrepo MS, Zapata LN. Estado nutricional del hierro en gestantes adolescentes: Medellín, Colombia. Rev Fac Nac Salud Pública. 2014;32:71-9.
Ministerio de Salud y Protección Social, Profamilia. Encuesta Nacional de Demografía y Salud. Componente demográfico. ENDS Colombia, 2015. Bogotá; 2015. p. 1-430.
Fecha de consulta: 11 de marzo de 2017. Disponible en: http://profamilia.org.co/docs/ENDS%20%20TOMO%20I.pdf
Fondo de Población de Naciones Unidas -UNFPAAmérica Latina y el Caribe. América Latina y el Caribe tienen la segunda tasa más alta de embarazo adolescente en el mundo. Fecha de consulta: 11 de marzo de 2017. Disponible en: http://lac.unfpa.org/es/news/am%C3%A9rica-latina-y-el-caribe-tienen-la-segunda-tasam%C3%A1s-alta-de-embarazo-adolescente-en-el-mund-1
Guevara-Núñez SP. Aspectos nutricionales de la gestación. En: Parra Pineda MO, Angel Müller E, editores. Obstetricia integral siglo XXI. Primera edición. Bogotá: Universidad Nacional de Colombia; 2009. p.136-61.
Eriksson B, Löf M, Olausson H, Forsum E. Body fat, insulin resistance, energy expenditure and serum concentrations of leptin, adiponectin and resistin before, during and after pregnancy in healthy Swedish women. Br J Nutr. 2010;103:50-7. https//doi.org/10.1017/S0007114509991371
Miehle K, Stepan H, Fasshauer M. Leptin, adiponectin and other adipokines in gestational diabetes mellitus and preeclampsia. Clin Endocrinol (Oxf). 2012;76:2-11. https//doi.org/10.1111/j.1365-2265.2011.04234.x
Scholl TO, Stein TP, Smith WK. Leptin and maternal growth during adolescent pregnancy. Am J Clin Nutr. 2000;72:1542-7. https://doi.org/10.1093/ajcn/72.6.1542
Valdés ER, Lattes KA, Muñoz HS, Barja PY, Papapietro KV. First-trimester adiponectin and subsequent development of preeclampsia or fetal growth restriction. Gynecol Obstet Invest. 2011;72:152-6. https//doi.org/10.1159/000328418
Crume TL, Shapiro AL, Brinton JT, Glueck DH, Martínez M, Kohn M, et al. Maternal fuels and metabolic measures during pregnancy and neonatal body composition: The Healthy Start Study. J Clin Endocrinol Metab. 2015;100:1672-80. https//doi.org/10.1210/jc.2014-2949
Costa e Silva LI, Gomes FM, Valente MH, Escobar AM, Brentani AV, Grisi SJ. The intergenerational effects on birth weight and its relations to maternal conditions, Sao Paulo, Brazil. Biomed Res Int. 2015;2015:615034. https://doi.org/10.1155/2015/615034
República de Colombia, Ministerio de Salud. Resolución número 00002465 de 2016. Fecha de consulta: 4 de marzo de 2017. Disponible en: https://www.minsalud.gov.co/Normatividad_Nuevo/Resolucion%202465%20de%202016.pdf
Ministerio de Salud y Protección Social, Colciencias. Guía de práctica clínica del recién nacido prematuro. Sistema General de Seguridad Social en Salud – Colombia. 2013 Guía 04. p.1-512. Fecha de consulta: 16 de abril de 2017. Disponible en: https://www.minsalud.gov.co/sites/rid/Lists/BibliotecaDigital/RIDE/INEC/IETS/GPC_Completa_Premat.pdfojrteeriuieruieriure
Battaglia FC, Lubchenco LO. A practical classification of newborn infants by weight and gestational age. J Pediatr. 1967;71:159-63.
Chandrasekaran S, Neal-Perry G. Long-term consequences of obesity on female fertility and the health of the offspring. Curr Opin Obstet Gynecol. 2017;29:180-7. https//doi.org/10.1097/GCO.0000000000000364
Chandi A, Sirohiwal D, Malik R. Association of early maternal hypertriglyceridemia with pregnancy-induced hypertension. Arch Gynecol Obstet. 2015;292:1135-43.
http//doi.org/10.1007/s00404-015-3706-1
Kac G, dos Santos Vaz J, Schlüssel MM, Moura AS.Creactive protein and hormones but not IL-6 are associated to body mass index in first trimester of pregnancy. Arch Gynecol Obstet. 2011;284:567-73. https//org/10.1007/s00404-010-1573-3
Walsh JM, Byrne J, Mahony RM, Foley ME, McAuliffe FM. Leptin, fetal growth and insulin resistance in nondiabetic pregnancies. Early Hum Dev. 2014;90:271-4. Early Hum Dev. 2014;90:271-4. https//doi.org/10.1016/j.earlhumdev.2014.03.007
Münzberg H, Morrison CD. Structure, production and signaling of leptin. Metabolism. 2015;64:13-23. https/doi.org//10.1016/j.metabol.2014.09.010
Tessier DR, Ferraro ZM, Gruslin A. Role of leptin in pregnancy: Consequences of maternal obesity. Placenta. 2013;34:205-11. https//doi.org/10.1016/j.placenta.2012.11.035
Zhao Y, Li Q, Li YC. Effects of body mass index and body fat percentage on gestational complications and outcomes. J Obstet Gynaecol Res. 2014;40:705-10. Fecha de consulta: 25 de marzo de 2018. Disponible en: http://www.placentajournal.org/article/S0143-4004(12)00470-5/pdf
Cinti S, Mitchell G, Barbatelli G, Murano I, Ceresi E, Faloia E, et al. Adipocyte death defines macrophage localization and function in adipose tissue of obese mice and humans. J Lipid Res. 2005;46:2347-55. Fecha de consulta: 20 de marzo de 2018. Disponible en: http://www.jlr.org/content/46/11/2347.long
Hotamisligil GS, Budavari A, Murray D, Spiegelman BM. Reduced tyrosine kinase activity of the insulin receptor in obesity-diabetes. Central role of tumor necrosis factoralpha. J Clin Invest. 1994;94:1543-9. https//doi.org/10.1172/JCI117495
Schenk S, Saberi M, Olefsky JM. Insulin sensitivity: Modulation by nutrients and inflammation. Clin Invest. 2008;118:2992-3002. https//doi.org/10.1172/JCI34260
Mlinar B, Marc J. New insights into adipose tissue dysfunction in insulin resistance. Clin Chem Lab Med. 2011;49:1925-35. https//doi.org/10.1515/CCLM.2011.697
Marchi J, Berg M, Dencker A, Olander EK, Begley C. Obesity in pregnancy – a review of reviews. Obes Rev. 2015;16:621-38. https://doi.org/10.1111/obr.12288
Hoffman DJ, Reynolds RM, Hardy DB. Developmental origins of health and disease: current knowledge and potential mechanisms. Nutr Rev. 2017;75:951-70. https://doi.org/10.1093/nutrit/nux053
Misra VK, Trudeau S. The influence of overweight and obesity on longitudinal trends in maternal serum leptin levels during pregnancy. Obesity. 2011;19:416-21. https//doi.org/10.1038/oby.2010.172
Schanton M, Maymó JL, Pérez-Pérez A, Sánchez-Margalet V, Varone CL. Involvement of leptin in the molecular physiology of the placenta. Reproduction. 2018;155:R1-12. https//doi.org/10.1530/REP-17-0512
Briffa J, McAinch A, Romano T, Wlodek M, Hryciw DH. Leptin in pregnancy and development: A contributor to adulthood disease? Am J Physiol Endocrinol Metab. 2015;308:E335-50. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00312.2014
Khalyfa A, Carreras A, Hakim F, Cunningham JM, Wang Y, Gozal D. Effects of late gestational high-fat diet on body weight, metabolic regulation and adipokine expression in offspring. Int J Obes. 2013;37:1481-9. https://doi.org/10.1038/ijo.2013.12
García-Cardona MC, Huang F, García-Vivas JM, López-Camarillo C, Del Río-Navarro BE, Navarro-Olivos E, et al. DNA methylation of leptin and adiponectin promoters in children is reduced by the combined presence of obesity and insulin resistance. Int J Obes. 2014;38:1457-65. https://doi.org/10.1038/ijo.2014.30
Ali O, Cerjak D, Kent JW, James R, Blangero J, Carless MA, et al. Methylation of SOCS3 is inversely associated with metabolic syndrome in an epigenome-wide association study of obesity. Epigenetics. 2016;11:699-707. https://doi.org/10.1080/15592294.2016.1216284
Lacroix M, Battista M-C, Doyon M, Ménard J, Ardilouze J-L, Perron P, et al. Lower adiponectin levels at first trimester of pregnancy are associated with increased insulin resistance and higher risk of developing gestational diabetes mellitus. Diabetes Care. 2013;36:1577-83. https://doi.org/10.2337/dc12-1731
Aye ILMH, Powell TL, Jansson T. Review: Adiponectin-The missing link between maternal adiposity, placental transport and fetal growth? Placenta. 2013;34(Suppl.):S40-5. https://doi.org//10.1016/j.placenta.2012.11.024
Mise H, Yura S, Itoh H, Nuamah M, Takemura M, Sagawa N, et al. The relationship between maternal plasma leptin levels and fetal growth restriction. Endocr J. 2007;54:945-51. https://doi.org/10.1507/endocrj.K06-225
Catov JM, Patrick TE, Powers RW, Ness RB, Harger G, Roberts JM. Maternal leptin across pregnancy in women with small-for-gestational-age infants. Am J Obstet Gynecol. 2007;196:558. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2007.01.032
Nezar MA, El-Baky AM, Soliman OA, Abdel-Hady HA, Hammad AM, Al-Haggar MS. Endothelin-1 and leptin as markers of intrauterine growth restriction. Indian J Pediatr. 2009;76:485-8. https://doi.org/10.1007/s12098-009-0079-0
Yamashita H, Yasuhi I, Fukuda M, Kugishima Y, Yamauchi Y, Kuzume A, et al. The association between maternal insulin resistance in mid-pregnancy and neonatal birthweight in uncomplicated pregnancies. Endocr J. 2014;61:1019-24. https://doi.org/10.1507/endocrj.EJ14-0163
Barrett HL, Nitert MD, McIntyre HD, Callaway LK. Normalizing metabolism in diabetic pregnancy: Is it time to target lipids? Diabetes Care. 2014;37:1484-93. https://doi.org/10.2337/dc13-1934
Mossayebi E, Arab Z, Rahmaniyan M, Almassinokiani F, Kabir A. Prediction of neonates’ macrosomia with maternal lipid profile of healthy mothers. Pediatr Neonatol. 2014;55:28-34.
Kulkarni SR, Kumaran K, Rao SR, Chougule SD, Deokar TM, Bhalerao A, et al. Maternal lipids are as important as glucose for fetal growth: Findings from the Pune Maternal Nutrition Study. Diabetes Care. 2014;36:2706-13. https://doi.org/10.2337/dc12-2445
Boghossian NS, Mendola P, Liu A, Robledo C, Yeung EH. Maternal serum markers of lipid metabolism in relation to neonatal anthropometry. Journal Perinatol. 2017;37:629-35. https://doi.org/10.1038/jp.2017.22
Schreuder YJ, Hutten BA, van Eijsden M, Jansen EH, Vissers MN, Twickler MT, et al. Ethnic differences in maternal total cholesterol and triglyceride levels during pregnancy: The contribution of demographics, behavioural factors and clinical characteristics. Eur J Clin Nutr. 2011;65:580-9. https://doi.org/10.1038/ejcn.2010.282
Ritterath C, Rad NT, Siegmund T, Heinze T, Siebert G, Buhling KJ. Adiponectin during pregnancy: Correlation with fat metabolism, but not with carbohydrate metabolism. Arch Gynecol Obstet. 2010;281:91-6. https://doi.org/10.1007/s00404-009-1087-z
Perichart-Perera O, Muñoz-Manrique C, Reyes-López A, Tolentino-Dolores M, Espino y Sosa S, Ramírez-González MC. Metabolic markers during pregnancy and their association with maternal and newborn weight status. PLoS One. 2017;12:1-12. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0180874
Algunos artículos similares:
- Elpidia Poveda, Pilar Trujillo, Francisco Ruiz, Elizabeth Lopez, Glucemia y concentraciones de insulina en sangre de ratas Wistar sometidas a dieta alta en grasa y a tratamiento con péptidos miméticos de leptina , Biomédica: Vol. 28 Núm. 1 (2008)
- Stella Carrasco Rodríguez, Myriam Sanchez Gómez, Niveles séricos de IGF-I e IGFBP-3 en adolescentes embarazadas provenientes de un sector socioeconómico de bajos ingresos , Biomédica: Vol. 21 Núm. 4 (2001)
- Luis Miguel Sosa, Luz Libia Cala, Julio César Mantilla, Tuberculosis congénita asociada con tuberculosis materna miliar diseminada , Biomédica: Vol. 27 Núm. 4 (2007)
- Jacqueline Chaparro, Moisés Wasserrnanz, Adecuación de una prueba radiométrica para la detección de resistencia múltiple de Plasmodium falciparum a medicamentos , Biomédica: Vol. 19 Núm. 1 (1999)
- Jacqueline Chaparro, Moisés Wasserman, Comparación de técnicas in vitro para detectar resistencia de Plasmodium falciparum a medicamentos , Biomédica: Vol. 19 Núm. 2 (1999)
- Eliana P. Calvo, María O. Rojas, Jacqueline Chaparro, Moisés Wasserman, Expresión del gen asociado con la resistencia múltiple a medicamentos (pfmdrl) en cepas colombianas de Plasmodium falciparum , Biomédica: Vol. 19 Núm. 3 (1999)
- Nélida Muñoz, Clara Inés Agudelo, Maria Victoria Ovalle, María Helena Realpe, Edilma Jaramillo, Sandra Núñez, Martha Uzeta, Vianney Portilla, María del Pilar Crespo, María Elena Alvarez, Constanza Sabogal, Mercedes Cano, María Claudia Rodríguez, María Eugenia Peláez, Lesli Bruzón, Mileny Arregocés, Gloria Patricia Londoño, Gloria Inés Dussán, Liliana Patiño, Alix Robinson, Vigilancia en red de los serotipos y la susceptibilidad antimicrobiana de Salmonella spp., Shigella spp. Y Vibrio cholerae O1, 1997 - 1999 , Biomédica: Vol. 20 Núm. 3 (2000)
- Berta N. Restrepo, Diana M. Isaza, Clara L. Salazar, José L. Ramírez, Gloria E. Upegui, Marta Ospina, Ruth Ramírez, Dengue en el embarazo: efectos en el feto y el recién nacido. , Biomédica: Vol. 23 Núm. 4 (2003)
- Pamela Orjuela, Iveth González, Lyda Osorio, Terapia combinada como estrategia en la prevención de la resistencia a los antimaláricos. , Biomédica: Vol. 24 Núm. 4 (2004)
- Ernesto Montoro, Miguel Echemendía, Dihadenys Lemus, Antonio Marrero, María J. Llanes, José A. Valdivia, Vigilancia de la resistencia de Mycobacterium tuberculosis a las drogas antituberculosas en Cuba, 1995-1998. , Biomédica: Vol. 24 (2004): Suplemento 1
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
