Detección del virus del dengue en larvas y pupas de Aedes aegypti recolectadas en áreas rurales del municipio de Anapoima, Cundinamarca, Colombia
Resumen
Introducción. La incidencia y la prevalencia del dengue en Cundinamarca son elevadas y, recientemente, se detectó Aedes aegypti en algunas áreas rurales del departamento.
Objetivo. Evaluar la transmisión transovárica del virus del dengue en larvas y pupas recolectadas en áreas rurales del municipio de Anapoima.
Materiales y métodos. Se recolectaron ejemplares vivos en 53 viviendas y se transportaron al laboratorio de Anapoima, donde se clasificaron, se agruparon y se congelaron. Llevadas a Bogotá, se las homogeneizó, se les extrajo el ARN con Trizol®, se las sometió a una reacción en cadena de la polimerasa de transcripción inversa (Reverse Transcription Polymerase Change Reaction, RT-PCR) y a PCR convencional, y los productos amplificados se analizaron en geles de agarosa al 2 %.
Resultados. En 54,7 % de las viviendas evaluadas se encontraron formas inmaduras del vector y el serotipo más frecuente fue el DENV-1. Sin embargo, en algunos pools se detectó la presencia simultánea de los serotipos DENV 1 y 2, DENV 1 y 3, y DENV 1 y 4, así como los serotipos DENV 1, 2 y 3.
Conclusión. Los resultados confirmaron la transmisión vertical del virus de manera natural en el área rural del municipio, lo cual reafirma la capacidad vectorial de A. aegypti y explica, en parte, la persistencia del virus en la región y la posibilidad de que en la fase adulta el vector lo transmita sin haber consumido sangre infectada. Esta situación aumenta el riesgo de infección por el virus del dengue en Colombia y, por lo tanto, la necesidad de adelantar programas de prevención y control en todas las zonas con presencia del mosquito.
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Referencias bibliográficas
Christopher R. Aedes aegypti (L.). The yellow fever mosquito. Its life history, bionomics and structure. New York: Cambridge University Press; 1960. p. 739.
Manrique P, Che-Mendoza A, Rizzo N, Arana B, Pilger D, Lenhart A, et al. Operational guide for assessing the productivity of Aedes aegypti breeding sites Geneva: World Health Organization; 2011. https://doi.org/10.2471/TDR.10. 978-924-1500371
Icaza J. El mosquito Aedes aegypti y el dengue en México. México: Bayer de México; 2003. p. 152.
Tilak R, Ray S, Tilak V, Mukherji S. Dengue, chikungunya…and the missing entity-Zika fever: A new emerging threat. Med J Armed Forces India. 2016;72:157-63. https://doi.org/10.1016/j.mjafi.2016.02.017
Padilla JC, Rojas DP, Sáenz-Gómez R. Dengue en Colombia: epidemiología de la reemergencia a la hiperendemia. Bogotá: Guías de Impresión Ltda.; 2012. p. 1-17.
Suárez N. Registro de altitud del Aedes aegypti en Colombia. Biomédica 1981;1:225. https://doi.org/10.7705/biomedica.v1i4.1809
Ruiz-López F, González-Mazo A, Vélez-Mira A, Gómez GF, Zuleta L, Uribe S, et al. Presencia de Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762) y su infección natural con el virus dengue en alturas no registradas para Colombia. Biomédica. 2016;36:303-8. https://doi.org/10.7705/biomedica. v36i2.3301
Olano V, Matiz M, Lenhart A, Cabezas L, Vargas S, Jaramillo J, et al. Schools as potential risk sites for vector-borne disease transmission: Mosquito vectors in rural schools in two municipalities in Colombia. J Am Mosq Control Assoc. 2015;31:212-22. https://doi.org/10.2987/moco- 31-03-212-222.1
Morales A. Aedes aegypti en zona rural del municipio de La Mesa (Cundinamarca) Colombia, S.A. Biomédica. 1981;1:223-4. https://doi.org/10.7705/biomedica.v1i4.1806
Pérez-Castro R, Castellanos J, Olano V, Matiz M, Jaramillo J, Vargas S, et al. Detection of all four serotypes in Aedes aegypti female mosquitoes collected in a rural area in Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2016;111:233-40. https://doi.org/10.1590/0074-02760150363
Thenmozhi V, Tewari S, Manavalan R, Balasubramanian A, Gajanana A. Natural vertical transmission of dengue viruses in Aedes aegypti in southern India. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2000;94:507.
Thenmozhi V, Hiriyan J, Tewari S, Samuel P, Paramasivan R, Rajendran R, et al. Natural vertical transmission of dengue virus in Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) in Kerala, a southern Indian state. Jpn J Infect Dis. 2007;60:245-9.
Romero-Vivas C, Arango-Padilla P, Falconar A. Pupal productivity surveys to identify the key container habitats of Aedes aegypti (L) in Barranquilla, the principal seaport of Colombia. Ann Trop Med Parasitol. 2006;100(Suppl.1):S87-95. https://doi.org/10.1179/136485906X105543
Tinker M, Olano V. Ecología del Aedes aegypti en un pueblo de Colombia, Suramérica. Biomédica. 1993;13:5-14. https://doi.org/10.7705/biomedica.V13i1.2041
González R, Darsie JR Jr. Clave ilustrada para la deter-minación genérica de larvas de Culicidae de Colombia y el nuevo mundo. Bol Mus Entomol Univ Valle. 1996;4:21-37.
Tinker M, Stojanovich CJ. Identification of the pupae of receptacle breeding mosquitoes. Ann Entomol Soc Am. 1962;55:577-82.
Chien L, Liao T, Shu PY, Huang J, Gubler D, Chang G. Development of real time reverse transcriptase PCR assays to detect and serotype dengue viruses. J Clin Microbiol. 2006;44:1295-304. https://doi.org/10.1128/JCM.44.4.1295-1304.2006
Staley M, Dorman K, Bartholomay L, Fernández-Salas I, Farfán-Ale J, Loroño-Pino MA, et al. Universal primers for the amplification and sequence analysis of actin-1 from diverse mosquito species. J Am Mosq Control Assoc. 2010;26:214-8. https://doi.org/10.2987/09-5968.1
Grunnill M, Boots M. How important is vertical transmission of dengue viruses by mosquitoes (Diptera: Culicidae)? J Med Entomol. 2016;53:1-19. https://doi.org/10.1093/jme/tjv168
Khin M, Than K. Transovarial transmission of dengue 2 virus by Aedes aegypti in nature. Am J Trop. Med Hyg. 1983;32: 590-4. https://doi.org/10.4269/ajtmh.1983.32.590
Mbaika S, Lutomiah J, Chepkorir E, Mulwa F, Khayeka-Wandabwa C, Tigoi C, et al. Vector competence of Aedes aegypti in transmitting Chikungunya virus: Effects and implications of extrinsic incubation temperature on dissemi-nation and infection rates. Virol J. 2016;13:114. https://doi.org/10.1186/s12985-016-0566-7
Service M. Culicine mosquitoes (Culicinae). In: Medical Entomology for Students. Cambridge: Cambridge University Press; 2012. p. 52-80. https://doi.org/10.1017/CBO978051 1811012.007
Rey J, Lounibos P. Ecología de Aedes aegypti y Aedes albopictus en América y transmisión de enfermedades. Biomédica. 2015;35:177-85. https://doi.org/10.1590/S0120-41572015000200005
DANE. Conceptos básicos. Fecha de consulta: 31 de julio de 2016. Disponible en: http://www.dane.gov.co/files/inf_geo/4Ge_ConceptosBasicos.pdf
Bara J, Clark T. Remold susceptibility of larval Aedes aegypti and Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) to dengue virus. J Med Entomol. 2013;50:179-84.
Joshi V, Mourya D, Sharma R. Persistence of dengue -3 virus through transovarial transmission passage in successive generation of Aedes aegypti mosquitoes. Am J Trop Med Hyg. 2002;67:158-61.
Barrera R. Recomendaciones para la vigilancia de Aedes aegypti. Biomédica. 2016;36:454-62. https://doi.org/10.7705/biomedica.v36i3.2892
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- Marcela Conde, Lorena I. Orjuela, Cesar Augusto Castellanos, Manuela Herrera-Varela, Susana Licastro, Martha L. Quiñones, Evaluación de la sensibilidad a insecticidas en poblaciones de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) del departamento de Caldas, Colombia, en 2007 y 2011 , Biomédica: Vol. 35 Núm. 1 (2015)
- Wilber Gómez-Vargas, Kelly Valencia-Jiménez, Guillermo Correa-Londoño, Faiber Jaramillo-Yepes, Nuevas tabletas larvicidas de Bacillus thuringiensis var. israelensis: evaluación del efecto larvicida sobre Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en Colombia , Biomédica: Vol. 38 Núm. Sup. 2 (2018): Suplemento 2, Medicina tropical
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- Lucas Alcalá, Juliana Quintero, Catalina González-Uribe, Helena Brochero, Productividad de Aedes aegypti (L.) (Diptera: Culicidae) en viviendas y espacios públicos en una ciudad endémica para dengue en Colombia , Biomédica: Vol. 35 Núm. 2 (2015)
- Érika Patricia Alarcón, Ángela María Segura, Guillermo Rúa-Uribe, Gabriel Parra-Henao, Evaluación de ovitrampas para vigilancia y control de Aedes aegypti en dos centros urbanos del Urabá antioqueño , Biomédica: Vol. 34 Núm. 3 (2014)
- Tania Camacho, Fernando de la Hoz, Victor Cárdenas, Carmen Sánchez, Laura de Calderón, Ligia Pérez, Antonio Bermúdez, Vigilancia epidemiológica incompleta de la epidemia de dengue-2 en Ibagué, Colombia, 1995-1997 , Biomédica: Vol. 24 Núm. 2 (2004)
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