Coloración de Ziehl-Neelsen en el laboratorio de patología: rendimiento y contribución al diagnóstico de micobacterias en el lavado broncoalveolar
Resumen
Introducción. La coloración de Ziehl-Neelsen, con más de 100 años de uso, continúa vigente mundialmente.
Objetivo. Comparar el rendimiento de las pruebas diagnósticas utilizadas para la determinación de micobacterias en el laboratorio clínico de patología en muestras de lavado broncoalveolar.
Materiales y métodos. Se revisaron retrospectivamente 737 muestras de lavado broncoalveolar procesadas en el 2019 y el 2020 en el Hospital San Vicente Fundación (Medellín, Colombia) y se compararon las características de tres pruebas diagnósticas realizadas en paralelo: la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para micobacterias con detección de resistencia, el cultivo, y la coloración de Ziehl-Neelsen.
Resultados. Se catalogaron como enfermos a 93 de los 737 pacientes a partir de los resultados positivos en alguna de las tres pruebas. El cultivo tuvo una sensibilidad de 0,80, la PCR una de 0,76 y la coloración de Ziehl-Neelsen una de 0,51. Sin embargo, solo 5 de 75 (6,5 %) cultivos fueron positivos a las cuatro semanas y el resto lo fue a las ocho semanas. La PCR combinada con la coloración de Ziehl-Neelsen mejoró la sensibilidad de la PCR por sí sola, de 0,76 a 0,88, diferencia que fue estadísticamente significativa (p=0,022).
Conclusión. En las muestras de lavado broncoalveolar, el cultivo sigue siendo la prueba con mejor sensibilidad. El uso conjunto de la prueba de PCR y la coloración de Ziehl-Neelsen mejora significativamente la sensibilidad de la primera, lo que compensa la demora relativa en la entrega de los resultados debida al tiempo requerido para la tinción de Ziehl-Neelsen.
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Referencias bibliográficas
Khan MK, Islam MN, Ferdous J, Alam MM. An overview on epidemiology of tuberculosis. Mymensingh Med J. 2019;28:259-66.
Pezzella AT. History of pulmonary tuberculosis. Thorac Surg Clin. 2019;29:1-17. https://doi.org/10.1016/j.thorsurg.2018.09.002
Bañuls A-L, Sanou A, van Anh NT, Godreuil S. Mycobacterium tuberculosis: Ecology and evolution of a human bacterium. J Med Microbiol. 2015;64:1261-9. https://doi.org/10.1099/jmm.0.000171
Fadul S. Vigilancia y análisis del riesgo en salud pública, protocolo de vigilancia en salud pública de tuberculosis farmacorresistente. Bogotá, D.C.: Instituto Nacional de Salud; 2019.
Rodríguez-Castillo JG, Llerena C, Argoty-Chamorro L, Guerra J, Couvin D, Rastogi N, et al. Population structure of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis clinical isolates in Colombia. Tuberculosis (Edinb). 2020;125:102011. https://doi.org/10.1016/j.tube.2020.102011
Santos-Pereira A, Magalhães C, Araújo PMM, S Osório N. Evolutionary genetics of Mycobacterium tuberculosis and HIV-1: “The Tortoise and the Hare.” Microorganisms. 2021;9:147. https://doi.org/10.3390/microorganisms9010147
Gopalaswamy R, Subbian S. Corticosteroids for COVID-19 therapy: potential implications on tuberculosis. Int J Mol Sci. 2021;22:3773. https://doi.org/10.3390/ijms22073773
Anastasopoulou A, Ziogas DC, Samarkos M, Kirkwood JM, Gogas H. Reactivation of tuberculosis in cancer patients following administration of immune checkpoint inhibitors: Current evidence and clinical practice recommendations. J Immunother Cancer. 2019;7:239. https://doi.org/10.1186/s40425-019-0717-7
Naranjo PJ de, Rodríguez G, Rodríguez J, Caldas ML. La coloración de Ziehl-Neelsen en histopatología. Biomédica. 1988;8:84-93. https://doi.org/10.7705/biomedica.v8i3-4.1964
Rincón-Caballero OL, Cano-Romero MA, Aristizábal-Bernal BH. Diagnóstico de tuberculosis pulmonar en lavado broncoalveolar: desempeño de la PCR en comparación con las pruebas microbiológicas de rutina. Med Lab. 2017;23:475-84. https://doi.org/10.36384/01232576.26
Balows A, Hausler WJ Jr, Herrmann KL, Isenberg HD, Shadomy HJ. Manual of Clinical Microbiology. 5th edition. Washington, D.C.: American Society for Microbiology; 1991. p. 1384.
Bodal VK, Bal MS, Bhagat S, Kishan J, Deepika, Brar RK. Fluorescent microscopy and Ziehl-Neelsen staining of bronchoalveolar lavage, bronchial washings, bronchoscopic brushing and post bronchoscopic sputum along with cytological examination in cases of suspected tuberculosis. Indian J Pathol Microbiol. 2015;58:443-7. https://doi.org/10.4103/0377-4929.168849
Elbrolosy AM, El Helbawy RH, Mansour OM, Latif RA. Diagnostic utility of GeneXpert MTB/RIF assay versus conventional methods for diagnosis of pulmonary and extra-pulmonary tuberculosis. BMC Microbiol. 2021;21:144. https://doi.org/10.1186/s12866-021-02210-5
Wasim Yusuf N, Iram S, Zeenat A, Hussain S, Aslam M. Rapid diagnosis of tuberculosis using Xpert MTB/RIF assay - Report from a developing country. Pak J Med Sci. 2015;31:105-10. https://doi.org/10.12669/pjms.311.6970
Zheng L-H, Jia H-Y, Liu X-J, Sun H-S, Du F-J, Pan L-P, et al. Modified cytospin slide microscopy method for rapid diagnosis of smear-negative pulmonary tuberculosis. Int J Tuberc Lung Dis. 2016;20:456-61. https://doi.org/10.5588/ijtld.15.0733
van Deun A, Hamid Salim A, Aung KJM, Hossain MA, Chambugonj N, Hye MA, et al. Performance of variations of carbolfuchsin staining of sputum smears for AFB under field conditions. Int J Tuberc Lung Dis. 2005;9:1127-33.
Tuberculosis Division - International Union Against Tuberculosis and Lung Disease. Tuberculosis bacteriology--priorities and indications in high prevalence countries: Position of the technical staff of the Tuberculosis Division of the International Union Against Tuberculosis and Lung Disease. Int J Tuberc Lung Dis. 2005;9:355-61.
Karstaedt AS, Jones N, Khoosal M, Crewe-Brown HH. The bacteriology of pulmonary tuberculosis in a population with high human immunodeficiency virus seroprevalence. Int J Tuberc Lung Dis. 1998;2:312-6.
Khan EA, Starke JR. Diagnosis of tuberculosis in children: Increased need for better methods. Emerg Infect Dis. 1995;1:115-23. https://doi.org/10.3201/eid0104.950402
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- Manzour Hernando Hazbón, Avances recientes en métodos moleculares para el diagnóstico precoz y tuberculosis resistente al tratamiento , Biomédica: Vol. 24 (2004): Suplemento 1
- Alvaro Javier Idrovo, Raíces históricas, sociales y epidemiológicas de la tuberculosis en Bogotá, Colombia. , Biomédica: Vol. 24 Núm. 4 (2004)
- María Imaz, Sonia Allassia, Mónica Aranibar, Alba Gunia, Susana Poggi, Ana Togneri, Lidia Wolff, Group of Implementation of Fluorescence, Rendimiento de la microscopía de fluorescencia LED para la detección de bacilos ácido-alcohol resistentes en muestras respiratorias en laboratorios periféricos de Argentina , Biomédica: Vol. 37 Núm. 2 (2017)
- Juan Gabriel Bueno-Sánchez, Jairo René Martínez-Morales, Elena E. Stashenko, Wellman Ribón, Actividad antituberculosa de plantas colombianas , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)

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