Caracterización de dos brotes de fiebre tifoidea en Apartadó, Antioquia, 2005
Palabras clave:
brotes de enfermedades, fiebre tifoidea/epidemiología, Salmonella Typhi, infecciones por Salmonella, técnica de tipificación bacteriana, serotipificación
Resumen
Introducción. La caracterización de los brotes de fiebre tifoidea es importante epidemiológicamente, debido a que esto permite la búsqueda de la fuente y el desarrollo de medidas de control.Objetivo. Describir un brote de fiebre tifoidea en el municipio de Apartadó y caracterizar fenotípica y genotípicamente los aislamientos de Salmonella Typhi relacionados con él.
Materiales y métodos. Se estudiaron 44 pacientes, a 15 de ellos se les tomaron muestras para hemocultivos y a 7, muestras para coprocultivos. Los aislamientos bacterianos se estudiaron con pruebas bioquímicas y serotipificación y se determinó el perfil de susceptibilidad a antibióticos. Los aislamientos se evaluaron genotípicamente por reacción en cadena de la polimerasa para los genes hilA, invA e IS-200, y por electroforesis en campo pulsado con XbaI. Se estudiaron ocho muestras de agua asociadas al brote por reacción en cadena de la polimerasa y cultivo para la búsqueda de Salmonella.
Resultados. A 15/44 pacientes se les confirmó el diagnóstico clínico de fiebre tifoidea, a 13 por hemocultivos y a 2 por coprocultivos positivos para S. Typhi. Todos los aislamientos de S. Typhi fueron sensibles a los antibióticos probados. La reacción en cadena de la polimerasa confirmó la presencia de los genes hilA y invA e IS- 200 en todos los aislamientos estudiados. La electroforesis en campo pulsado agrupó 10 aislamientos en el patrón COINJPP.X01.0035, tres en el patrón COINJPPX01.0002, uno COINJPP.X01.0012 y uno COINJPPX01.0037. El estudio de aguas fue negativo para Salmonella spp.
Conclusiones. La electroforesis en campo pulsado estableció la presencia de dos brotes, que inicialmente, por epidemiología y pruebas fenotípicas del patógeno, habían sido descritos como uno solo. Además, permitió diferenciar dos aislamientos de origen clonal diferente, que indicaron casos aislados. No se pudo corroborar la fuente de infección en el agua.
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Referencias bibliográficas
1. Crump JA, Luby SP, Mintz ED. The global burden f typhoid fever. Bull World Health Organ. 2004;82:346-53.
2. Lesser CF, Miller SI. Salmonellosis. En: Braunwald E, Fauci AS, Kasper DL, Hauser SL, Longo DL, Jamenson JL, editors. Harrison‘s Principles of Internal Medicine. 15th ed. New York: McGraw-Hill; 2001. p.970-3.
3. Andrews WH, Hammack TS, Amaguana RM. Salmonella. In: Merker RL, editor. Food and Drug Administration. Bacteriological Analytical Manual. 8th ed. Gaithersburg: AOAC International; 1998.
4. Grupo de Microbiología, Instituto Nacional de Salud. Proyecto vigilancia por el laboratorio: molecular y fenotípica de Salmonella spp., uno de los principales agentes implicados en la enfermedad diarreica aguda. [Consultado: agosto de 2006]. Disponible en: http://www.ins.gov.co/pdf_investiga/Microbiologia_salm_05.pdf
5. Boletín Epidemiológico Semanal. Situación de las enfermedades transmisibles objeto de vigilancia intensificada en salud pública-Colombia 2002. [Consultado: agosto de 2006]. http://www.col.opsoms.
org/sivigila/2002/BOLE52_02.htm
6. Muñoz N, Agudelo CI, Realpe ME, Ovalle M, Laboratorios de Salud Pública. Vigilancia en red de la susceptibilidad antimicrobiana y de los serotipos de Salmonella spp, Shigella sp y Vibrio cholerae: informe de 2000-2001. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2002;7:177-92.
7. Olive DM, Bean P. Principles and applications of methods for ADN-based typing of microbial organisms. J Clin Microbiol. 1999;37:1661-9.
8. Threlfall EJ, Torre W, Ward LR, Dávalos-Pérez A, Rowe B, Gilbert I. Insertion sequence IS200 fingerprinting of Salmonella typhi: an assessment of epidemiological applicability. Epidemiol Infect 1994;112:253-61.
9. Marcus SI, Brumell JH, Pfeifer CG, Finlay BB. Salmonella pathogenicity islands: big virulence in small packages. Microbes Infect. 2000;2:145-56.
10. Wolffs P, Glencross K, Thibaudeau R, Griffiths M. Direct quantitation and detection of Salmonellae in biological samples without enrichment, using two-step filtration and real-time PCR. Appl Environ Microbiol. 2006;72:3896-900.
11. Chiu CH, Ou JT. Rapid identification of Salmonella serovars in feces by specific detection of virulence genes, invA and spvC, by an enrichment broth culturemultiplex PCR combination assay. J Clin Microbiol. 1996;34:2619-22.
12. Cortez AL, Carvalho AC, Ikuno AA, Bürger KP, Vidal-Martins AM. Identification of Salmonella spp. isolates from chicken abattoirs by multiplex-PCR. Res Vet Sci. 2006;81:340-4.
13. Kumar S, Balakrishna K, Batra H. Detection of Salmonella enterica serovar Typhi (S. Typhi) by selective amplification of invA, viaB, fliC-d and prt genes by polymerase chain reaction in mutiplex format. Lett Appl Microbiol. 2006;42:149-54.
14. Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an International standard. Appl Environ Microbiol. 2003;69:290-6.
15. Sánchez-Jiménez MM, Cardona-Castro N. Validation of a PCR for diagnosis of typhoid fever and salmonellosis by amplification of the hilA gene in clinical samples from Colombian patients. J Med Microbiol. 2004;53:875-8.
16. Beuzon CR, Chessa D, Casadesus J. IS200: an old and still bacterial transposon. Int Microbiol. 2004;7:3-12.
17. Ribot EM, Fair MA, Gautom R, Cameron DN, Hunter SB, Swaminathan B, et al. Standardization of pulsefield gel electrophoresis protocols for the subtyping of Escherichia coli O157:H7, Salmonella, and Shigella for PulseNet. Foodborne Pathog Dis. 2006;3:59-67.
18. Popoff MY, Le Minor L. Antigenic formulas of the Salmonella serovars. 8th Ed. Paris: WHO Collaborating Center for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur; 2001.
19. Clinical and Laboratory Standards Institute/NCCLS. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing fifteenth informational supplement, M100-S15. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2005.
20. Galan J, Curtiss R. Distribution of the invA, -B, -C, and -D genes of Salmonella typhimurium among other Salmonella serovars: invA mutants of Salmonella typhi are deficient for entry into mammalian cells. Infect Immun. 1991;59:2901-8.
21. McClelland M, Sanderson KE, Spieth J, Clifton SW, Latreille P, Courtney L et al. Complete genome sequence of Salmonella enterica serovar Typhimurium LT2. Nature. 2001;413:852-6.
22. Fantasia M, Paglietti B, Filetici E, Anastasio MP, Rubino S. Conventional and molecular approaches to isolates of Salmonella hadar from sporadic and epidemic cases. J Appl Microbiol. 1997;82:494-8.
23. Labarca J. Utilización del antibiotipo como marcador epidemiológico en infecciones intrahospitalarias: comparación con la epidemiología molecular. Rev Chilen Infect. 2002;19(Suppl.2):S157-60.
24. Salve A, Pichel M, Wiesner M, Hidalgo M, Terragano R, Alvarez A, et al. Molecular subtyping of Salmonella enterica serovar Typhi isolates from Colombia and Argentina. Foodborne Pathog Dis. 2006;3:142-52.
25. Chu YW, Cheung TK, Ng TK, Tsang D, To WK, Kam KM, et al. Quinolone resistance determinant qnrA3 in clinical isolates of Salmonella in 2000-2005 in Hong Kong. J Antimicrob Chemother. 2006;58:904-5.
26. Kariuki S, Gilks C, Revathi G, Hart CA. Genotypic analysis of multidrug-resistant Salmonella enterica serovar Typhi, Kenya. Emerg Infect Dis. 2000; 6:649-51.
27. Shakespeare WA, Davie D, Tonnerre C, Rubin MA, Strong M, Petti CA. Nalidixic acid-resistant Salmonella enterica serotype Typhi presenting as a primary psoas abscess: case report and review of the literature. J Clin Microbiol. 2005;43:996-8.
28. Cardona-Castro N, Sánchez-Jiménez M. Desarrollo y evaluación de una prueba de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), utilizando la secuencia del gen hilA para diagnóstico de fiebre entérica por Salmonella spp. Biomédica. 2004;24:194-9.
29. Hidalgo M, Gracia M, Ovalle MV, Wiesner M, Chávez J, Realpe ME, et al. Caracterización de los aislamientos de Salmonella typhimurium, asociado con un brote de intoxicación alimentaria en una localidad de Pasto, Nariño. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2004;9:81-96.
30. Ridley AM, Threlfall EJ, Rowe B. Genotypic characterization of Salmonella enteritidis phage types by plasmid analysis, ribotyping, and pulsed-field gel electrophoresis. J Clin Microbiol. 1998;36:2314-21.
31. Realpe ME, Gracia M, Ovalle MV, Wiesner M, Hidalgo M, Agudelo CI, et al. Brote de enfermedad transmitido por alimento causada por Salmonella Enteritidis, en Riosucio, Caldas. Caracterización fenotípica y molecular. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2005;10:321-6.
2. Lesser CF, Miller SI. Salmonellosis. En: Braunwald E, Fauci AS, Kasper DL, Hauser SL, Longo DL, Jamenson JL, editors. Harrison‘s Principles of Internal Medicine. 15th ed. New York: McGraw-Hill; 2001. p.970-3.
3. Andrews WH, Hammack TS, Amaguana RM. Salmonella. In: Merker RL, editor. Food and Drug Administration. Bacteriological Analytical Manual. 8th ed. Gaithersburg: AOAC International; 1998.
4. Grupo de Microbiología, Instituto Nacional de Salud. Proyecto vigilancia por el laboratorio: molecular y fenotípica de Salmonella spp., uno de los principales agentes implicados en la enfermedad diarreica aguda. [Consultado: agosto de 2006]. Disponible en: http://www.ins.gov.co/pdf_investiga/Microbiologia_salm_05.pdf
5. Boletín Epidemiológico Semanal. Situación de las enfermedades transmisibles objeto de vigilancia intensificada en salud pública-Colombia 2002. [Consultado: agosto de 2006]. http://www.col.opsoms.
org/sivigila/2002/BOLE52_02.htm
6. Muñoz N, Agudelo CI, Realpe ME, Ovalle M, Laboratorios de Salud Pública. Vigilancia en red de la susceptibilidad antimicrobiana y de los serotipos de Salmonella spp, Shigella sp y Vibrio cholerae: informe de 2000-2001. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2002;7:177-92.
7. Olive DM, Bean P. Principles and applications of methods for ADN-based typing of microbial organisms. J Clin Microbiol. 1999;37:1661-9.
8. Threlfall EJ, Torre W, Ward LR, Dávalos-Pérez A, Rowe B, Gilbert I. Insertion sequence IS200 fingerprinting of Salmonella typhi: an assessment of epidemiological applicability. Epidemiol Infect 1994;112:253-61.
9. Marcus SI, Brumell JH, Pfeifer CG, Finlay BB. Salmonella pathogenicity islands: big virulence in small packages. Microbes Infect. 2000;2:145-56.
10. Wolffs P, Glencross K, Thibaudeau R, Griffiths M. Direct quantitation and detection of Salmonellae in biological samples without enrichment, using two-step filtration and real-time PCR. Appl Environ Microbiol. 2006;72:3896-900.
11. Chiu CH, Ou JT. Rapid identification of Salmonella serovars in feces by specific detection of virulence genes, invA and spvC, by an enrichment broth culturemultiplex PCR combination assay. J Clin Microbiol. 1996;34:2619-22.
12. Cortez AL, Carvalho AC, Ikuno AA, Bürger KP, Vidal-Martins AM. Identification of Salmonella spp. isolates from chicken abattoirs by multiplex-PCR. Res Vet Sci. 2006;81:340-4.
13. Kumar S, Balakrishna K, Batra H. Detection of Salmonella enterica serovar Typhi (S. Typhi) by selective amplification of invA, viaB, fliC-d and prt genes by polymerase chain reaction in mutiplex format. Lett Appl Microbiol. 2006;42:149-54.
14. Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an International standard. Appl Environ Microbiol. 2003;69:290-6.
15. Sánchez-Jiménez MM, Cardona-Castro N. Validation of a PCR for diagnosis of typhoid fever and salmonellosis by amplification of the hilA gene in clinical samples from Colombian patients. J Med Microbiol. 2004;53:875-8.
16. Beuzon CR, Chessa D, Casadesus J. IS200: an old and still bacterial transposon. Int Microbiol. 2004;7:3-12.
17. Ribot EM, Fair MA, Gautom R, Cameron DN, Hunter SB, Swaminathan B, et al. Standardization of pulsefield gel electrophoresis protocols for the subtyping of Escherichia coli O157:H7, Salmonella, and Shigella for PulseNet. Foodborne Pathog Dis. 2006;3:59-67.
18. Popoff MY, Le Minor L. Antigenic formulas of the Salmonella serovars. 8th Ed. Paris: WHO Collaborating Center for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur; 2001.
19. Clinical and Laboratory Standards Institute/NCCLS. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing fifteenth informational supplement, M100-S15. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2005.
20. Galan J, Curtiss R. Distribution of the invA, -B, -C, and -D genes of Salmonella typhimurium among other Salmonella serovars: invA mutants of Salmonella typhi are deficient for entry into mammalian cells. Infect Immun. 1991;59:2901-8.
21. McClelland M, Sanderson KE, Spieth J, Clifton SW, Latreille P, Courtney L et al. Complete genome sequence of Salmonella enterica serovar Typhimurium LT2. Nature. 2001;413:852-6.
22. Fantasia M, Paglietti B, Filetici E, Anastasio MP, Rubino S. Conventional and molecular approaches to isolates of Salmonella hadar from sporadic and epidemic cases. J Appl Microbiol. 1997;82:494-8.
23. Labarca J. Utilización del antibiotipo como marcador epidemiológico en infecciones intrahospitalarias: comparación con la epidemiología molecular. Rev Chilen Infect. 2002;19(Suppl.2):S157-60.
24. Salve A, Pichel M, Wiesner M, Hidalgo M, Terragano R, Alvarez A, et al. Molecular subtyping of Salmonella enterica serovar Typhi isolates from Colombia and Argentina. Foodborne Pathog Dis. 2006;3:142-52.
25. Chu YW, Cheung TK, Ng TK, Tsang D, To WK, Kam KM, et al. Quinolone resistance determinant qnrA3 in clinical isolates of Salmonella in 2000-2005 in Hong Kong. J Antimicrob Chemother. 2006;58:904-5.
26. Kariuki S, Gilks C, Revathi G, Hart CA. Genotypic analysis of multidrug-resistant Salmonella enterica serovar Typhi, Kenya. Emerg Infect Dis. 2000; 6:649-51.
27. Shakespeare WA, Davie D, Tonnerre C, Rubin MA, Strong M, Petti CA. Nalidixic acid-resistant Salmonella enterica serotype Typhi presenting as a primary psoas abscess: case report and review of the literature. J Clin Microbiol. 2005;43:996-8.
28. Cardona-Castro N, Sánchez-Jiménez M. Desarrollo y evaluación de una prueba de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), utilizando la secuencia del gen hilA para diagnóstico de fiebre entérica por Salmonella spp. Biomédica. 2004;24:194-9.
29. Hidalgo M, Gracia M, Ovalle MV, Wiesner M, Chávez J, Realpe ME, et al. Caracterización de los aislamientos de Salmonella typhimurium, asociado con un brote de intoxicación alimentaria en una localidad de Pasto, Nariño. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2004;9:81-96.
30. Ridley AM, Threlfall EJ, Rowe B. Genotypic characterization of Salmonella enteritidis phage types by plasmid analysis, ribotyping, and pulsed-field gel electrophoresis. J Clin Microbiol. 1998;36:2314-21.
31. Realpe ME, Gracia M, Ovalle MV, Wiesner M, Hidalgo M, Agudelo CI, et al. Brote de enfermedad transmitido por alimento causada por Salmonella Enteritidis, en Riosucio, Caldas. Caracterización fenotípica y molecular. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2005;10:321-6.
Cómo citar
1.
Cardona-Castro NM, Sánchez-Jiménez MM, Usuga-Silva LY, Arboleda-Naranjo M, Garzón E, Vélez A, et al. Caracterización de dos brotes de fiebre tifoidea en Apartadó, Antioquia, 2005. Biomed. [Internet]. 1 de junio de 2007 [citado 4 de abril de 2025];27(2):236-43. Disponible en: https://revistabiomedicaorg.biteca.online/index.php/biomedica/article/view/219
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- Oscar G. Gómez, Vacuna atenuada de Salmonella como vector de antígenos heterólogos , Biomédica: Vol. 20 Núm. 2 (2000)
- Johnny Durango, Germán Arrieta, Salim Mattar, Presencia de Salmonella spp. en un área del Caribe colombiano: un riesgo para la salud pública. , Biomédica: Vol. 24 Núm. 1 (2004)
- Zamira E. Soto-Varela, Clara Gilma Gutiérrez, Yurina de Moya, Ramón Mattos, Hernando José Bolívar-Anillo, José Luis Villarreal, Detección molecular de Salmonella spp., Listeria spp. y Brucella spp. en queso artesanal fresco comercializado en Barranquilla: un estudio piloto , Biomédica: Vol. 38 Núm. Sup. 2 (2018): Suplemento 2, Medicina tropical
- Luz Clemencia Fandiño, Noel Verjan, Un tipo de secuencia común de Salmonella Enteritidis de origen aviar y de humano con gastroenteritis en Ibagué, Colombia , Biomédica: Vol. 39 Núm. Sp. 1 (2019): Suplemento 1, Microbiología médica, mayo
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