Efecto tóxico de b-cipermetrina, deltametrina y fenitrotión en cepas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) y Triatoma maculata (Erichson, 1848) (Hemiptera, Reduviidae)
Palabras clave:
Triatominae, Triatoma, enfermedad de Chagas, insecticidas organofosforados, piretroides
Resumen
Introducción. La evaluación de la susceptibilidad a insecticidas de las diferentes especies de triatominos, involucrados en la transmisión de la enfermedad de Chagas de cada región, es indispensable para el éxito de las campañas de control.Objetivo. Determinar la línea base de susceptibilidad para los principios activos deltametrina, b-cipermetrina y fenitrotión en ninfas de primer y quinto estadio de Triatoma dimidiata y en ninfas de primer estadio de Triatoma maculata.
Materiales y métodos. Se utilizó el protocolo de evaluación de la actividad insecticida en triatominos (técnica de aplicación tópica) para las especies en estudio.
Resultados. Los valores de DL50 en ninfas de primer estadio de T. maculata expresados en nanogramos/insecto (ng/i) fueron de: 0,07, 0,05 y 4,12. Las DL99 fueron de: 1,08, 0,37 y 17,89 para deltametrina, b- cipermetrina y fenitrotión respectivamente. En T. dimidiata los valores de DL 50 fueron de: 0,44, 0,46 y 16,45. Las DL99 obtenidas fueron de: 2,22, 1,97 y 36,07 ng/i para deltametrina, b- cipermetrina y fenitrotión respectivamente. En ninfas de quinto estadio de T. dimidiata las DL50 fueron de: 510,72, 1623,59 y 838,91. Las DL99 fueron de: 9607,50, 11717,91 y 1525 para deltametrina, b- cipermetrina y fenitrotión respectivamente.
Conclusión. En ninfas de primer estadio de T. dimidiata y T. maculata los insecticidas piretroides fueron mas efectivos; en ninfas de quinto estadio de T. dimidiata la efectividad de los piretroides del organofosforado fue diferente con las DL50; las ninfas de este estadio requirieron dosis altas comparadas con las utilizadas para otros triatominos, lo cual sugiere una baja susceptibilidad. La DL99 para el organofosforado fue significativamente menor, lo que podría indicar una mayor efectividad en campo. Es importante realizar estudios de efectos sinergistas para mostrar el posible rol de mecanismos bioquímicos que determine su tolerancia a los piretroides, esto representa un nuevo reto para las campañas de control en los países andinos y centroamericanos donde esta especie es endémica.
Descargas
Los datos de descargas todavía no están disponibles.
Referencias bibliográficas
1. World Health Organization. Infectious diseases home. Specific information: disease. 2004. [Consultado: abril 27 de 2005]. Disponible en: http://www.who.int/ctd/chagas/burdens.htm.
2. Dujardin JP,Schofield CJ, Panzera F. Les vecteurs de la maladie de Chagas. Recherches taxonomiques, biologiques et génétiques. Bruxelles: Academie Royale des Sciences d'Outre Mer; 2000. p.162.
3. Aguilar M H, Abad Franch F, Racines VJ, Paucar CA. Epidemiology of Chagas disease in Ecuador. A brief review. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):387-93.
4. Schofield CJ. Challenges of Chagas disease vector control in Central America. Geneva: WHO;2000. p.36.
5. Angulo VM. Ensayo de estrategias de control y vigilancia de Triatoma dimidiata en Colombia. En: Guhl F, editor. Primer Taller Internacional Sobre Control de la Enfermedad de Chagas; Curso de Diagnóstico, Manejo y Tratamiento de la Enfermedad de Chagas. VI Reunión de la Iniciativa Andina para el control de la Enfermedad de Chagas. Bogotá D.C.: Ediciones Uniandes; 2005. p.91-102.
6. Guhl F, Angulo VM, Restrepo M, Nicholls S, Montoya R. Estado del arte de la enfermedad de Chagas en Colombia y estrategias de control. Biomédica 2003;23:31-4.
7. Molina JA, Gualdrón LE, Brochero HL, Olano VA, Barrios D, Guhl F. Distribución actual e importancia epidemiológica de las especies de triatominos (Reduviidae:Triatominae) en Colombia. Biomédica 2000;20:344-60.
8. Zeledón R, Montenegro VM, Zeledón O. Evidence of colonization of man-made ecotopes by Triatoma dimidiata (Latreille,1811) in Costa Rica. Mem Inst Oswaldo Cruz 2001;96:659-60.
9. Corredor A, Santacruz M, Paez S, Guatame LA. Distribución de los triatominos domiciliados en Colombia. Bogotá: Ministerio de Salud-Instituto Nacional de Salud; 1990 p.144.
10. Zerba EN. Susceptibility and resistance to insecticides of Chagas disease vectors. Medicina (B Aires) 1999;59:41-6.
11. Dias J, Schofield CJ. The evolution of Chagas disease (American trypanosomiasis) control after 90 years since Carlos Chagas discovery. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):103-21.
12. Guhl F, Vallejo GA. Interruption of Chagas disease transmission in the Andean countries: Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):413-5.
13. Angulo VM, Sandoval CM. Triatominos y Programa Nacional de Control en Colombia. Monitoreo de la resistencia a insecticidas en triatominos en América Latina, Buenos Aires: Fundación Mundo Sano, Red Latinoamericana de Control de Triatominos RELCOT; 2001. p.21-6.
14. Sánchez JF. Informe comportamiento del programa de Chagas, Cundinamarca años 2002-2005. Secretaría de Salud de Cundinamarca. En: Guhl F, editor. Primer Taller Internacional Sobre Control de la Enfermedad de Chagas. Curso de Diagnóstico, Manejo y Tratamiento de la Enfermedad de Chagas. VI Reunión de la Iniciativa Andina para el control de la Enfermedad de Chagas. Bogotá D.C: Ediciones Uniandes; 2005. p.135-40.
15. Nakagagua J, Cordón-Rosales C, Juárez J, Itzep C, Nonami T. Impact of residual spraying on Rhodnius prolixus and Triatoma dimidiata in the department of Zacapa in Guatemala. Mem Inst Oswaldo Cruz 2003;98:277-81.
16. Ceceré MC, Gurtler RE, Canale DM, Chuit R, Cohen JE. Effects of partial housing improvement and insecticide spraying on the reinfestation dynamics of Triatoma infestans in rural northwestern Argentina. Acta Trop 2002;84:101-16.
17. Tabarú Y, Monroy C, Rodas A, Mejia M, Rosales R. Chemical control of Triatoma dimidiata and Rhodnius prolixus (Reduviidae:Triatominae), the principal vectors of Chagas disease in Guatemala. Med Entomol Zool 1998;49:87-92.
18. Vassena CV, Piccollo MI, Zerba EN. Insecticide resistance in Brazilian Triatoma infestans and Venezuelan Rhodnius prolixus. Med Vet Entomol 2000;14:51-5.
19. Vassena CV, Piccollo MI. Monitoreo de resistencia a insecticidas en poblaciones de campo en Triatoma infestans y Rhodnius prolixus, insectos vectores de la enfermedad de Chagas. Boletín Electrónico Mensual del Servicio de Toxicología del Sanatorio de Niños de Rosario 2003:13. [Consultado: abril 5 de 2004]. Disponible en: http://www.sertox.com.ar/retel/n03/004.htm.
20. Piccollo MI, Vassena C, Santo Orihuela P, Barrios S, Zaidemberg M, Zerba E. High resistance to pyrethroid insecticides associated with ineffective field treatments in Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae) from Northern Argentina. J Med Entomol 2005;42:637-42.
21. Oliveira Filho AM. Differences of susceptibility of five Triatomine species to pyrethroid insecticides -implications for Chagas disease vector control. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):425-8.
22. Fox I, Bayona IG. Toxicity of DDT, dieldrin, mlathion and fenthion to Rhodnius prolixus in the laboratory. Bull World Health Organ 1966;35:974-6.
23. Sandoval CM. Actividad insecticida del malatión y la deltametrina en una cepa colombiana de Rhodnius prolixus (Hemiptera:Rudiviidae). Monitoreo de la resistencia a insecticidas en triatominos en América Latina. Buenos Aires: Fundación Mundo Sano, Red Latinoamericana de Control de Triatominos RELCOT;2001. p.27-33.
24. WHO. Protocolo de evaluación de efecto insecticida sobre triatominos. Acta Toxicol Arg 1994;2:29-32. 25. Zerba EN. Evolución del control químico de los insectos vectores de la enfermedad de Chagas. Anales de la Sociedad Científica Argentina 1997;227:35-9.
26. Alzogaray RA, Zerba EN. Third instar nymphs of Rhodnius prolixus exposed to a-cyanopyrethroids: from hyperactivity to death. Arch Insect Biochem Physiol 2001;46:119-26.
27. Kostaropoulos I, Papadopoulos AI, Metaxakis A, Boukouvala E, Papadopoulou-Mourkidou E. Glutathione S-transferase in the defence against pyrethroids in insects. Insect Biochem Mol Biol 2001;31:313-9.
28. Fontán A, Zerba EN. Influence of the nutritional state of Triatoma infestans over the insecticidal activity of DDT. Comp Biochem Physiol C 1992;101:589-91.
29. Georghiou G. Insecticide resistance and prospects for its management. Residue Rev 1980;76:131-45.
2. Dujardin JP,Schofield CJ, Panzera F. Les vecteurs de la maladie de Chagas. Recherches taxonomiques, biologiques et génétiques. Bruxelles: Academie Royale des Sciences d'Outre Mer; 2000. p.162.
3. Aguilar M H, Abad Franch F, Racines VJ, Paucar CA. Epidemiology of Chagas disease in Ecuador. A brief review. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):387-93.
4. Schofield CJ. Challenges of Chagas disease vector control in Central America. Geneva: WHO;2000. p.36.
5. Angulo VM. Ensayo de estrategias de control y vigilancia de Triatoma dimidiata en Colombia. En: Guhl F, editor. Primer Taller Internacional Sobre Control de la Enfermedad de Chagas; Curso de Diagnóstico, Manejo y Tratamiento de la Enfermedad de Chagas. VI Reunión de la Iniciativa Andina para el control de la Enfermedad de Chagas. Bogotá D.C.: Ediciones Uniandes; 2005. p.91-102.
6. Guhl F, Angulo VM, Restrepo M, Nicholls S, Montoya R. Estado del arte de la enfermedad de Chagas en Colombia y estrategias de control. Biomédica 2003;23:31-4.
7. Molina JA, Gualdrón LE, Brochero HL, Olano VA, Barrios D, Guhl F. Distribución actual e importancia epidemiológica de las especies de triatominos (Reduviidae:Triatominae) en Colombia. Biomédica 2000;20:344-60.
8. Zeledón R, Montenegro VM, Zeledón O. Evidence of colonization of man-made ecotopes by Triatoma dimidiata (Latreille,1811) in Costa Rica. Mem Inst Oswaldo Cruz 2001;96:659-60.
9. Corredor A, Santacruz M, Paez S, Guatame LA. Distribución de los triatominos domiciliados en Colombia. Bogotá: Ministerio de Salud-Instituto Nacional de Salud; 1990 p.144.
10. Zerba EN. Susceptibility and resistance to insecticides of Chagas disease vectors. Medicina (B Aires) 1999;59:41-6.
11. Dias J, Schofield CJ. The evolution of Chagas disease (American trypanosomiasis) control after 90 years since Carlos Chagas discovery. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):103-21.
12. Guhl F, Vallejo GA. Interruption of Chagas disease transmission in the Andean countries: Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):413-5.
13. Angulo VM, Sandoval CM. Triatominos y Programa Nacional de Control en Colombia. Monitoreo de la resistencia a insecticidas en triatominos en América Latina, Buenos Aires: Fundación Mundo Sano, Red Latinoamericana de Control de Triatominos RELCOT; 2001. p.21-6.
14. Sánchez JF. Informe comportamiento del programa de Chagas, Cundinamarca años 2002-2005. Secretaría de Salud de Cundinamarca. En: Guhl F, editor. Primer Taller Internacional Sobre Control de la Enfermedad de Chagas. Curso de Diagnóstico, Manejo y Tratamiento de la Enfermedad de Chagas. VI Reunión de la Iniciativa Andina para el control de la Enfermedad de Chagas. Bogotá D.C: Ediciones Uniandes; 2005. p.135-40.
15. Nakagagua J, Cordón-Rosales C, Juárez J, Itzep C, Nonami T. Impact of residual spraying on Rhodnius prolixus and Triatoma dimidiata in the department of Zacapa in Guatemala. Mem Inst Oswaldo Cruz 2003;98:277-81.
16. Ceceré MC, Gurtler RE, Canale DM, Chuit R, Cohen JE. Effects of partial housing improvement and insecticide spraying on the reinfestation dynamics of Triatoma infestans in rural northwestern Argentina. Acta Trop 2002;84:101-16.
17. Tabarú Y, Monroy C, Rodas A, Mejia M, Rosales R. Chemical control of Triatoma dimidiata and Rhodnius prolixus (Reduviidae:Triatominae), the principal vectors of Chagas disease in Guatemala. Med Entomol Zool 1998;49:87-92.
18. Vassena CV, Piccollo MI, Zerba EN. Insecticide resistance in Brazilian Triatoma infestans and Venezuelan Rhodnius prolixus. Med Vet Entomol 2000;14:51-5.
19. Vassena CV, Piccollo MI. Monitoreo de resistencia a insecticidas en poblaciones de campo en Triatoma infestans y Rhodnius prolixus, insectos vectores de la enfermedad de Chagas. Boletín Electrónico Mensual del Servicio de Toxicología del Sanatorio de Niños de Rosario 2003:13. [Consultado: abril 5 de 2004]. Disponible en: http://www.sertox.com.ar/retel/n03/004.htm.
20. Piccollo MI, Vassena C, Santo Orihuela P, Barrios S, Zaidemberg M, Zerba E. High resistance to pyrethroid insecticides associated with ineffective field treatments in Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae) from Northern Argentina. J Med Entomol 2005;42:637-42.
21. Oliveira Filho AM. Differences of susceptibility of five Triatomine species to pyrethroid insecticides -implications for Chagas disease vector control. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(Suppl. 1):425-8.
22. Fox I, Bayona IG. Toxicity of DDT, dieldrin, mlathion and fenthion to Rhodnius prolixus in the laboratory. Bull World Health Organ 1966;35:974-6.
23. Sandoval CM. Actividad insecticida del malatión y la deltametrina en una cepa colombiana de Rhodnius prolixus (Hemiptera:Rudiviidae). Monitoreo de la resistencia a insecticidas en triatominos en América Latina. Buenos Aires: Fundación Mundo Sano, Red Latinoamericana de Control de Triatominos RELCOT;2001. p.27-33.
24. WHO. Protocolo de evaluación de efecto insecticida sobre triatominos. Acta Toxicol Arg 1994;2:29-32. 25. Zerba EN. Evolución del control químico de los insectos vectores de la enfermedad de Chagas. Anales de la Sociedad Científica Argentina 1997;227:35-9.
26. Alzogaray RA, Zerba EN. Third instar nymphs of Rhodnius prolixus exposed to a-cyanopyrethroids: from hyperactivity to death. Arch Insect Biochem Physiol 2001;46:119-26.
27. Kostaropoulos I, Papadopoulos AI, Metaxakis A, Boukouvala E, Papadopoulou-Mourkidou E. Glutathione S-transferase in the defence against pyrethroids in insects. Insect Biochem Mol Biol 2001;31:313-9.
28. Fontán A, Zerba EN. Influence of the nutritional state of Triatoma infestans over the insecticidal activity of DDT. Comp Biochem Physiol C 1992;101:589-91.
29. Georghiou G. Insecticide resistance and prospects for its management. Residue Rev 1980;76:131-45.
Cómo citar
1.
Reyes M, Angulo VM, Sandoval CM. Efecto tóxico de b-cipermetrina, deltametrina y fenitrotión en cepas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) y Triatoma maculata (Erichson, 1848) (Hemiptera, Reduviidae). Biomed. [Internet]. 1 de enero de 2007 [citado 5 de abril de 2025];27(1esp):75-82. Disponible en: https://revistabiomedicaorg.biteca.online/index.php/biomedica/article/view/250
Algunos artículos similares:
- Marlene Reyes, Víctor Manuel Angulo, Ciclo de vida de Triatoma dimidiata Latreille, 1811 (Hemiptera, Reduviidae) en condiciones de laboratorio: producción de ninfas para ensayos biológicos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)
- Nelson Grisales, Omar Triana, Víctor Angulo, Nicolás Jaramillo, Gabriel Parra-Henao, Francisco Panzera, Andrés Gómez-Palacio, Diferenciación genética de tres poblaciones colombianas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) mediante análisis molecular del gen mitocondrial ND4 , Biomédica: Vol. 30 Núm. 2 (2010)
- Corina María Arroyo, Lyda Esteban, Silvia Catalá, Víctor Manuel Angulo, Variación del fenotipo antenal de poblaciones del domicilio, peridomicilio y silvestres de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduviidae) en Santander, Colombia , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- María Elena Torres, Hugo Luis Rojas , Luis Carlos Alatorre , Luis Carlos Bravo , Mario Iván Uc , Manuel Octavio González , Lara Cecilia Wiebe , Alfredo Granados , Factores biogeográficos determinantes de la distribución de Triatoma recurva en Chihuahua, México, 2014 , Biomédica: Vol. 40 Núm. 3 (2020)
- Luis Alberto Corté, Henry Alberto Suárez, Triatominos (Reduviidae: Triatominae) en un foco de enfermedad de Chagas en Talaigua Nuevo (Bolívar, Colombia). , Biomédica: Vol. 25 Núm. 4 (2005)
- Luis Reinel Vásquez, Cleber Galvão, Néstor A. Pinto, Humberto Granados, Primer registro de Triatoma nigromaculata (Stål, 1859) (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) para Colombia. , Biomédica: Vol. 25 Núm. 3 (2005)
- Keila Torres, Francys Avendaño-Rangel, Eliécer Lizano, María Rojas, Claudina Rodríguez-Bonfante, Rafael Bonfante-Cabarcas, Elis Aldana, Evaluación de la estructura espacial de Triatoma maculata del centro-occidente de Venezuela y su viabilidad alimentado con sangre humana en condiciones de laboratorio , Biomédica: Vol. 30 Núm. 1 (2010)
- José Alejandro Martínez-Ibarra, Jorge Alejandro Martínez-Grant, Miguel Roberto Verdugo-Cervantes, Rafael Bustos-Saldaña, Benjamín Nogueda-Torres, Vigilancia de la presencia de triatominos mediante gallineros en el sur de Jalisco, México , Biomédica: Vol. 30 Núm. 1 (2010)
- Andrea Arévalo, Julio César Carranza, Felipe Guhl, Gustavo Adolfo Vallejo, Patrones electroforéticos de hemoproteínas salivares (nitroforinas) de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Omar Cantillo-Barraza, Andrés Gómez-Palacio, Diego Salazar, Ana María Mejía-Jaramillo, Jaime Calle, Omar Triana, Distribución geográfica y ecoepidemiología de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en la Isla Margarita del departamento de Bolívar, Colombia , Biomédica: Vol. 30 Núm. 3 (2010)
Sección
Artículos originales
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
