Inhibición de las respuestas de defensina A y cecropina A contra la infección del virus dengue 1 en Aedes aegypti
Resumen
Introducción. Es esencial determinar las interacciones entre los virus y los mosquitos para disminuir la transmisión viral. Estas interacciones constituyen un sistema muy complejo y muy regulado conocido como sistema inmunitario innato del mosquito, el cual produce péptidos antimicrobianos, moléculas efectoras que funcionan contra las infecciones bacterianas y fúngicas; se tiene poca información de su acción sobre los virus.
Objetivo. Determinar la expresión de dos genes AMP (defensina A y cecropina A) en mosquitos Aedes aegypti infectados con el virus DENV-1.
Materiales y métodos. Se infectaron oralmente mosquitos de generación F1 con DENV-1 y mediante el análisis con PCR en tiempo real se determinó el potencial papel de los genes defensina A y cecropina A en el control de la replicación del DENV-1 en Ae. aegypti. Como referencia, se infectaron mosquitos con Escherichia coli.
Resultados: Los mosquitos no infectados expresaron niveles basales de los ARNm de los genes defensina A y cecropina A en diversos momentos después de la alimentación. Los mosquitos infectados experimentaron una reducción, por lo menos, de ocho veces en la expresión de estos ARNm con respecto a los mosquitos de control en todo el periodo posterior a la alimentación. En contraste con el comportamiento del virus DENV-1, los resultados mostraron que la infección bacteriana produjo una regulación positiva de los genes defensina y cecropina; sin embargo, la inducción de los transcritos ocurrió tardíamente (15 días).
Conclusión. El virus DENV-1 inhibió la expresión de los genes defensina A y cecropina A en una población silvestre de Ae. aegypti en Venezuela.
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Referencias bibliográficas
Ramos-Castañeda J, Barreto dos Santos F, Martínez-Vega R, Galvão de Araujo JM, Joint G, Sarti E. Dengue in Latin America: Systematic review of molecular epidemiological trends. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11:e0005224. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0005224
Liu T, Xu Y, Wang X, Gu J, Yan G, Chen XG. Antiviral systems in vector mosquitoes. Dev Comp Immunol. 2018;83:34-43. https://doi.org/10.1016/j.dci.2017.12.025
Sim S, Jupatanakul N, Dimopoulos G. Mosquito immunity against arboviruses. Viruses. 2014;6:4479-504. https://doi.org/10.3390/v6114479
Wang Y, Chang M, Wang X, Zheng AH, Zou Z. The immune strategies of mosquito Aedes aegypti against microbial infection. Dev Comp Immunol. 2018;83:12-21. https://doi.org/10.1016/j.dci.2017.12.001
Blair C. Mosquito RNAi is the major innate immune pathway controlling arbovirus infection and transmission. Future Microbiol. 2011;6:265-77. https://doi.10.2217/fmb.11.11
Carvalho-Leandro D, Ayres C, Guedes D, Suesdek L, Melo-Santos MA, Oliveira CF. Immune transcript variations among Aedes aegypti populations with distinct susceptibility to dengue virus serotype 2. Acta Trop. 2012;124:113-9. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2012.07.006
Mains J, Brelsfoard C, Rose R, Dobson S. Female adult Aedes albopictus suppression by Wolbachia-infected male mosquitoes. Sci Rep. 2016 6:33846. https://doi.org/10.1038/srep33846
Xi Z, Ramírez JL, Dimopoulos G. The Aedes aegypti toll pathway controls dengue virus infection. PLoS Pathog. 2008;4:e1000098. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000098
Sanders HR, Foy BD, Evans AM, Ross LS, Beaty BJ, Olson KE, et al. Sindbis virus induces transport processes and alters expression of innate immunity pathway genes in the midgut of the disease vector, Aedes aegypti. Insect Biochem Mol Biol. 2005;35:1293-307. https://doi.org/10.1016/j.ibmb.2005.07.006
Luplertlop N, Surasombatpattana P, Patramool S, Dumas E, Wasinpiyamongkol, Saune L, et al. Induction of a peptide with activity against a broad spectrum of pathogens in the Aedes aegypti salivary gland, following infection with dengue virus. PLoS Pathog. 2011;7:e1001252. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1001252
Wasinpiyamongkol L, Missé D, Luplertlop N. Induction of defensin response to dengue infection in Aedes aegypti. Entomol Science. 2015;18:199-206. https://doi.org/10.1111/ens.12108
Pompon J, Manuel M, Ng G, Wong B, Shan C, Manokaran G, et al. Dengue subgenomic flaviviral RNA disrupts immunity in mosquito salivary glands to increase virus transmission. PLoS Pathog. 2017;13:e1006535. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006535
Mellor PS. Replication of arboviruses in insect vectors. J Comp Path. 2000;123:231-47. https://doi.org/10.1053/jcpa.2000.0434
Urdaneta L, Herrera F, Pernalete M, Zoghbi N, Rubio-Palis Y, Barrios R, et al. Detection of dengue viruses in field-caught Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) in Maracay, Aragua state, Venezuela by type-specific polymerase chain reaction. Infect Genet Evol. 2005;5:177-84 https://doi.org/10.1016/j.meegid.2004.09.004
Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res. 2001;29:2002-7. https://doi.org/10.1093/nar/29.9.e45
Fragkoudis R, Chi Y, Siu R, Barry G, Attarzadeh-Yazdi G, Merits A, et al. Semliki Forest virus strongly reduces mosquito host defense signaling. Insect Mol Biol. 2008;17:647-56. https://doi.org/10.1111/j.1365-2583.2008.00834.x
Colpitts T, Cox J, Vanlandingham D, Feitosa F, Cheng G, Kurscheid S, et al. Alterations in the Aedes aegypti transcriptome during Infection with West Nile, dengue and yellow fever viruses. PLoS Pathog. 2011;7: e1002189. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002189
Chang-Hyun K, Muturi E. Effect of larval density and Sindbis virus infection on immune responses in Aedes aegypti. J Insect Physiol. 2013;59:604-10. https://doi.org/10.1016/j.jinsphys.2013.03.010
Lin C, Chou C, Hsu Y, Lien J, Wang Y, Chen S, et al. Characterization of two mosquito STATs, AaSTAT and CtSTAT. Differential regulation of tyrosine phosphorylation and DNA binding activity by lipopolysaccharide treatment and by Japanese encephalitis virus infection. J Biol Chem. 2004;279:3308-17. https://doi.org/10.1074/jbc.M309749200
Sim S, Dimopoulos G. Dengue virus inhibits immune responses in Aedes aegypti cells. PLoS One. 2010;5 e10678. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0010678
Lambrechts L, Scott T. Mode of transmission and the evolution of arbovirus virulence in mosquito vectors. Proc R Soc B. 2009;276:1369-78. https://doi.org/10.1098/rspb.2008.1709
Cooper D, Chamberlain C, Lowenberger C. Aedes FADD: A novel death domain-containing protein required for antibacterial immunity in the yellow fever mosquito, Aedes aegypti. J Insect Biochem Mol Biol. 2009;39:47-54. https://doi.org/10.1016/j.ibmb.2008.09.011
Bartholomay L, Michel K. Mosquito Immunobiology: the intersection of vector health and vector competence. Annu Rev Entomol. 2018;63:145-67. https://doi.org/10.1146/annurev-ento-010715-023530
Lowenberger C. Innate immune response of Aedes aegypti. Insect Biochem Mol Biol. 2001;31:219-22. https://doi.org/10.1016/s0965-1748(00)00141-7
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- Marcela Conde, Lorena I. Orjuela, Cesar Augusto Castellanos, Manuela Herrera-Varela, Susana Licastro, Martha L. Quiñones, Evaluación de la sensibilidad a insecticidas en poblaciones de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) del departamento de Caldas, Colombia, en 2007 y 2011 , Biomédica: Vol. 35 Núm. 1 (2015)
- Celeny Ortiz, Guillermo L. Rúa-Uribe, Carlos A. Rojas, Conocimientos, prácticas y aspectos entomológicos del dengue en Medellín, Colombia: un estudio comparativo entre barrios con alta y baja incidencia , Biomédica: Vol. 38 Núm. Sup. 2 (2018): Suplemento 2, Medicina tropical
- Jorge R. Rey, Philip Lounibos, Ecología de Aedes aegypti y Aedes albopictus en América y transmisión de enfermedades , Biomédica: Vol. 35 Núm. 2 (2015)
- Mabel Carabalí, Clara Beatriz Ocampo, María Eugenia Toledo, Lyda Osorio, Difusión masiva de reportes situacionales sobre dengue: efectos de la intervención en Guadalajara de Buga, Colombia , Biomédica: Vol. 33 (2013): Suplemento 1, Fiebres hemorrágicas
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