Estudio histopatológico de tejido cardiaco de roedores infectados con Trypanosoma cruzi capturados en barrios suburbanos de Mérida, México
Resumen
Introducción. Trypanosoma cruzi es el agente causal de la tripanosomiasis americana, enfermedad endémica en México. Los roedores Mus musculus y Rattus rattus son reservorios del parásito, el cual invade las fibras cardiacas y desarrolla nidos parasitarios produciendo diversas lesiones. Los estudios histopatológicos en roedores naturalmente infectados son escasos.
Objetivo. Describir los tipos y las frecuencias de las lesiones microscópicas en muestras de tejido cardiaco de M. musculus y R. rattus infectados con T. cruzi capturados en Mérida, México.
Materiales y métodos. Los roedores se capturaron en los barrios suburbanos de Mérida. Se extrajo el tejido cardiaco y se procesó por la técnica de inclusión en parafina y tinción con hematoxilina y eosina. Su examen se hizo con un microscópico convencional y se determinaron todas las lesiones y su grado de afección.
Resultados. Se trabajaron ocho muestras de tejido de M. musculus y siete de R. rattus. Se encontraron nidos parasitarios en siete del total de las muestras: en 3 de las 8 de M. musculus y en 4 de las 7 de R. rattus. Se observaron infiltrados inflamatorios en todas las muestras. Otras lesiones fueron la degeneración de las fibras cardiacas (8/15), la congestión de los vasos sanguíneos (6/15) y la necrosis (5/15).
Discusión. Las lesiones observadas están descritas en los modelos animales experimentales y en los humanos con tripanosomiasis americana. Los infiltrados inflamatorios se han descrito como la lesión más significativa en los humanos y en los reservorios en la etapa crónica de la enfermedad.
Conclusión. Las lesiones observadas están asociadas con la infección con T. cruzi, lo cual confirma que los roedores estudiados son reservorios de este parásito.
Descargas
Referencias bibliográficas
López-Cancino SA, Tun-Ku E, de la Cruz-Feliz HK, Ibarra-Cerdeña CN, Izeta-Alberdi A, Pech-May A, et al. Landscape ecology of Trypanosoma cruzi in the southern Yucatán Peninsula. Acta Trop. 2015;151:58-72. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2015.07.021
Ramsey JM, Townsend-Peterson A, Carmona-Castro O, Moo-Llanes DA, Nakazawa Y, Butrick M, et al. Atlas of Mexican Triatominae (Reduviidae: Hemiptera) and vector transmission of Chagas disease. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2015;110:339-52. https://doi.org/10.1590/0074-02760140404
Moncayo A, Ortiz-Yanine MI. An update on Chagas disease (human American trypanosomiasis). Ann Trop Med Parasitol. 2006;100:663-77.
Leite MF, Moyer MS, Andrews NW. Expression of the mammalian calcium signaling response to Trypanosoma cruzi in Xenopus laevis oocytes. Mol Biochem Parasitol. 1998;92:1-13. https://doi.org/10.1016/S0166-6851(97)00211-9
Prata A. Clinical and epidemiological aspects of Chagas disease. Lancet Infect Dis. 2001;1:92-100. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(01)00065-2
Carrada-Bravo T. Trypanosoma cruzi: historia natural y diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Rev Mex Patol Clin. 2004;51:205-19.
Bonney KM, Engman DM. Chagas heart disease pathogenesis: One mechanism or many? Curr Mol Med. 2008;6:510-8. https://doi.org/10.2174/156652408785748004
Postan M, Dvorak JA, McDaniel JP. Studies of Trypanosoma cruzi clones in bred mice. I. A comparison of the course of infection of C3H/HeN mice with two clones isolated from a common source. Am J Trop Med Hyg. 1983;32:497-506. https://doi.org/10.4269/ajtmh.1984.33.236
Andrade LO, Galvão LM, Meirelles MN, Chiari E, Pena SD, Macedo AM. Differential tissue tropism of Trypanosoma cruzi strains: An in vitro study. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2010;105:834-7. https://doi.org/10.1590/S0074-02762010000600018
Rozas M, Botto-Mahan C, Coronado X, Ortiz S, Cattan PE, Solari A. Coexistence of Trypanosoma cruzi genotypes in wild and peridomestic mammals in Chile. Am J Trop Med Hyg. 2007;77:643-53.
Rademaker V, Herrera HM, Raffel TR, D’Andrea PS, Freitas TPT, Abreu UG, et al. What is the role of small rodents in the transmission cycle of Trypanosoma cruzi and Trypanosoma evansi (Kinetoplastida Trypanosomatidae)? A study case in the Brazilian Pantanal. Acta Trop. 2009;111:102-7. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2009.02.006
Brigada AM, Doña R, Caviedes-Vidal E, Moretti E, Basso B. American Tripanosomiasis: A study on the prevalence of Trypanosoma cruzi and Trypanosoma cruzi-like organisms in wild rodents in San Luis province, Argentina. Rev Soc Bras Med Trop. 2010;43:249-53. https://doi.org/10.1590/S0037-86822010000300007
Alemán A, Guerra T, Maikis TJ, Milholland MT, Castro-Arellano I, Forstner MR, et al. The prevalence of Trypanosoma cruzi, the causal agent of Chagas disease, in Texas rodent populations. Ecohealth. 2017;14:130-143. https://doi.org/10.1007/s10393-017-1205-5
Gürtler RE, Cardinal MV. Reservoir host competence and the role of domestic and commensal hosts in the transmission of Trypanosoma cruzi. Acta Trop. 2015;151:32-50. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2015.05.029
Zavala-Velázquez J, Barrera-Pérez M, Rodríguez-Félix ME, Guzmán-Marín E, Ruíz-Piña H. Infection by Trypanosoma cruzi in mammals in Yucatán, México: A serological and parasitological study. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 1996;38:289-92.
Panti-May JA, de Andrade RR, Gurubel-González Y, Palomo-Arjona E, Sodá-Tamayo L, Meza-Sulú J, et al. A survey of zoonotic pathogens carried by house mouse and black rat populations in Yucatán, México. Epidemiol Infect. 2017;145:2287-95. https://doi.org/10.1017/S0950268817001352
Panti-May JA, Hernández-Betancourt SF, Torres-Castro MA, Machaín-Williams C, Cigarroa-Toledo N, Sodá L, et al. Population characteristics of human-commensal rodents present in households from Mérida, Yucatán, México. MANTER: Journal of Parasite Biodiversity. 2016;5. https://doi.org/10.13014/K2VD6WCX
Organización Panamericana de la Salud (OPS). Guía para vigilancia, prevención, control y manejo clínico de la Enfermedad de Chagas aguda transmitida por alimentos. Fecha de consulta: 10 de octubre de 2017. Disponible en: http://bvs.panalimentos.org/local/File/Guia_Enfermedad_Chagas_2009esp.pdf
de Diego JA, Palau MT, Gamallo C, Penin P. Relationships between histopathological findings and phylogenetic divergence in Trypanosoma cruzi. Trop Med Int Health. 1998;3:222-33. https://doi.org/10.1111/j.1365-3156.1998.tb00275.x
Acosta-Viana KY, Guzmán-Marín E, Jiménez-Coello M, Torres-León MA, Colín-Flores RF, Ortega-Pacheco A. Cardiac lesions in naturally infected dogs with Trypanosoma cruzi. J Agr Sci Tech. 2011;A1:932-8.
Torres-Castro MA, Hernández-Betancourt SF, Torres-León MA, Puerto FI. Lesiones histológicas asociadas a la posible infección por Trypanosoma cruzi (Chagas, 1909) en corazones de roedores sinantrópicos capturados en Yucatán, México. An Biol. 2016;38:29-35.
Orellana R, Islebe G, Espadas C. Presente, pasado y futuro de los climas de la Península de Yucatán. Naturaleza y sociedad en el área Maya. Pasado, presente y futuro. Primera edición. México, DF: Academia Mexicana de Ciencias, CICY; 2003. p. 37-52.
Flores JS, Espejel I. Tipos de vegetación de la Península de Yucatán. Etnoflora Yucatanense, Fascículo 3. Primera edición. Mérida, México: Universidad Autónoma de Yucatán; 1994. p. 135.
Hernández-Betancourt S, Cimé-Pool J, Medina-Peralta S, González-Villanueva M. Fluctuación poblacional de Ototylomys Phyllotis Merriam, 1901 (Rodentia: Muridae) en una selva mediana subcaducifolia del sur de Yucatán, México. Acta Zool Mex. 2008;24:161-77.
Gaertner DJ, Hallman TM, Hankenson FC, Batchelder MA. Anesthesia and analgesia for laboratory rodents. En: Fish RE, Brown MJ, Danneman PJ, Karas AZ, editors. Anesthesia and analgesia in laboratory animals. Second edition. London: Elsevier; 2008. p. 239-97.
Leary S, Underwood W, Anthony R, Cartner S, Corey D, Grandin T, et al. AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2013 edition. Schaumburg, IL: American Veterinary Medical Association; 2013. p.102.
Armed Forces Institute of Pathology (AFIP). Methods in Histotechnology. Third edition. Washington, D.C.: American Registry of Pathology; 1992. p.279.
Torres-Castro M, Guillermo-Cordero L, Hernández-Betancourt S, Gutiérrez-Ruíz E, Agudelo-Flórez P, Peláez-Sánchez R, et al. First histopathological study in kidneys of rodents naturally infected with Leptospira pathogenic species from Yucatán, México. Asian Pac J Trop Med. 2016;9:145-7. https://doi.org/10.1016/j.apjtm.2016.01.018
Trigo T, Valero E. Patología general veterinaria. Cuarta edición. México, D.F.: Servicios editoriales de la Universidad Autónoma de México; 2004. p. 437.
Moser DR, Kirchhoff LV, Donelson JE. Detection of Trypanosoma cruzi by DNA amplification using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol. 1989;27:1477-82.
Andrade ZA, Andrade SG, Correa R, Sadigursky M, Ferrans VJ. Myocardial changes in acute Trypanosoma cruzi infection. Ultrastructural evidence of immune damage and the role of microangiopathy. Am J Pathol. 1994;144:1403-11.
Zúñiga C, Vargas R, Vergara U. Evolución de la infección con Trypanosoma cruzi en cepas susceptibles y resistentes de ratones. Arch Med Vet. 2002;34:183-8. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2002000200004
Díaz-Limay E, Escalante H, Jara CA. Niveles de parasitemia y alteraciones histopatológicas en Mus musculus BALB/c infectado con Trypanosoma cruzi obtenido de Panstrongylus chinai del Valle Chamán, La Libertad – Perú. Parasitol Latinoam. 2004;59:153-8. https://doi.org/10.4067/S0717-77122004000300011
Marinho CR, Bucci DZ, Dagli ML, Bastos KR, Grisotto MG, Sardinha LR, et al. Pathology affects different organs in two mouse strains chronically infected by a Trypanosoma cruzi clone: A model for genetic studies of Chagas’ disease. Infect Immun. 2004;72:2350-7. https://doi.org/10.1128/IAI.72.4.2350-2357.2004
Roellig DM, Yabsley MJ. Infectivity, pathogenicity, and virulence of Trypanosoma cruzi isolates from sylvatic animals and vectors, and domestic dogs from the United States in ICR strain mice and SD strain rats. Am J Trop Med Hyg. 2010;83:519-22. https://doi.org/10.4269/ajtmh.2010.09-0663
Castro-Sesquen YE, Gilman RH, Yauri V, Angulo N, Verastegui M, Velásquez DE, et al. Cavia porcellus as a model for experimental infection by Trypanosoma cruzi. Am J Pathol. 2011;179:281-8. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2011.03.043
León CM, Montilla M, Vanegas R, Castillo M, Parra E, Ramírez JD. Murine models susceptibility to distinct Trypanosoma cruzi I genotypes infection. Parasitology. 2017;144:512-9. https://doi.org/10.1017/S0031182016001980
Araujo-Carreira JC, Jansen AM, Deane MP, Lenzi HL. Histopathological study of experimental and natural infections by Trypanosoma cruzi in Didelphis marsupialis. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1996;91:609-18. https://doi.org/10.1590/S0074-02761996000500012
Pizzi T, Wallace RA, Villagra OR, Muñoz VS, Ortiz ZS, Solari IA. Concordancia de lesiones histológicas en ratones infectados por dos poblaciones de Trypanosoma cruzi de Chile. Rev Med Chile. 2005;133:432-8. https://doi.org/10.4067/S0034-98872005000400006
Rossi MA, Tanowitz HB, Malvestio LM, Celes MR, Campos EC, Blefari V, et al. Coronary microvascular disease in chronic Chagas cardiomyopathy including an overview on history, pathology, and other proposed pathogenic mechanism. PLoS Negl Trop Dis. 2010;4:e674. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000674
Bazan C, Micucci L, Romina F, Triquel MF, Lo Presti MS, Baez A, et al. Persistence of Trypanosoma cruzi in experimental chagasic cardiomyopathy. Anti-Infective Agents. 2012;10:136-41. https://doi.org/10.2174/2211362611208020136
Andrade LO, Machado CR, Chiari E, Pena SD, Macedo AM. Differential tissue distribution of diverse clones of Trypanosoma cruzi in infected mice. Mol Biochem Parasitol. 1999;100:163-72. https://doi.org/10.1016/S0166-6851(99)90035-X
Moreno-Medina E, Valerio-Campos I, Goyenaga-Castro P. Miocarditis y miocardiopatía dilatada por Trypanosoma cruzi: reporte de un caso. Parasitol Latinoam. 2007;62:148-53. https://doi.org/10.4067/S0717-77122007000200008
Zhang L, Tarleton RL. Parasite persistence correlates with disease severity and localization in chronic Chagas’ disease. J Infect Dis. 1999;180:480-6. https://doi.org/10.1086/314889
Kierszenbaum F. Mechanisms of pathogenesis in Chagas disease. Acta Parasitol. 2007;52:1-12. https://doi.org/10.2478/s11686-006-0048-y
Cruz L, Vivas A, Montilla M, Hernández C, Flórez C, Parra E, et al. Comparative study of the biological properties of Trypanosoma cruzi I genotypes in a murine experimental model. Infect Genet Evol. 2015;29:110-117. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2014.11.012
Jansen AM, Carreira JC, Deane MP. Infection of a mammal by monogenetic insect trypanosomatids (kynetoplastida, trypanosomatidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 1988;3:271-2. https://doi.org/10.1590/S0074-02761988000300001
Tarleton R. Chagas disease: A role for autoimmunity? Trends Parasitol. 2003;19:447-51. https://doi.org/10.1016/j.pt.2003.08.008
Villela-Ribeiro LC, Barbosa AA Jr, Andrade ZA. Pathology of intracardiac nerves in experimental Chagas disease. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1019-25. https://doi.org/10.1590/S0074-02762002000700016
Rendón DA, Genes CM, Triana O. Lesión celular del miocardio y actividad de la ATPsintasa mitocondrial en ratas infectadas con una cepa colombiana de Trypanosoma cruzi. Biomédica. 2007;27(Sup.1):40-9. https://doi.org/10.7705/biomedica.v27i1.247
Roellig DM, McMillan K, Ellis AE, Vandeberg JL, Champagne DE, Yabsley MJ. Experimental infection of two South American reservoirs with four distinct strains of Trypanosoma cruzi. Parasitology. 2010;137:959-66. https://doi.org/10.1017/S0031182009991995
Teixeira AR, Nascimiento RJ, Sturm NR. Evolution and pathology in Chagas disease – A review. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;101:463-91. http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762006000500001
Algunos artículos similares:
- Iveth J. González, Las metacaspasas y su rol en la vida y muerte de los parásitos protozoarios humanos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Mario Francisco Guerrero, Elementos para la evaluación eficaz de productos naturales con posibles efectos antihipertensivos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 4 (2009)
- Andrea Arévalo, Julio César Carranza, Felipe Guhl, Jairo A. Clavijo, Gustavo Adolfo Vallejo, Comparación de los patrones de alimentación y defecación de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) en condiciones de laboratorio , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Gustavo Adolfo Vallejo, Felipe Guhl, Julio César Carranza, Omar Triana, Gerardo Pérez, Paola Andrea Ortiz, Dairo Humberto Marín, Lina Marcela Villa, Jazmín Suárez, Isaura Pilar Sánchez, Ximena Pulido, Ingrid Bibiana Rodríguez, Leyder Elena Lozano, Daniel Alfonso Urrea, Fredy Arvey Rivera, César Cuba-Cuba, Jairo Alfonso Clavijo, Interacción tripanosoma-vector-vertebrado y su relación con la sistemática y la epidemiología de la tripanosomiasis americana , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Andrés F. Londoño, Silvana Levis, Juan D. Rodas, Hantavirus como agentes emergentes de importancia en Suramérica , Biomédica: Vol. 31 Núm. 3 (2011)
- Biviana Andrea Duque, Diego Aranzazu, Piedad Agudelo-Flórez, Andrés F. Londoño, Víctor H. Quiroz, Juan David Rodas, Rattus norvegicus como indicador de la circulación de Capillaria hepatica y Taenia taeniaeformis en la Plaza Minorista de Medellín, Colombia , Biomédica: Vol. 32 Núm. 4 (2012)
- Claudia Urueña, Paola Santander, Hugo Díez, Marleny Montilla, Ignacio Zarante, María del Carmen Thomas, Manuel Carlos López, Concepción Puerta, Localización cromosómica de los genes KMP-11 en cepas KP1(+) y KP1 (-) de Trypanosoma rangeli. , Biomédica: Vol. 24 Núm. 2 (2004)
- Silvana Marisa Montenegro, María Cristina Tarrés, Juan Carlos Picena, Stella Maris Martínez, Conducta alimentaria y perfil glucémico en dos líneas de ratas con diabetes genética: eSS y eSMT. , Biomédica: Vol. 25 Núm. 4 (2005)
- Jeison Monroy-Gómez, Orlando Torres-Fernández, Distribución de calbindina y parvoalbúmina y efecto del virus de la rabia sobre su expresión en la médula espinal de ratones , Biomédica: Vol. 33 Núm. 4 (2013)
- Leticia Bequer, Tahiry Gómez, José Luis Molina, Daniel Artiles, Rosa Bermúdez, Sonia Clapés, Acción de la estreptozotocina en un modelo experimental de inducción neonatal de la diabetes , Biomédica: Vol. 36 Núm. 2 (2016)
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
