Resistencia a la meticilina y producción de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcus aureus y Staphylococcus coagulasa negativa en México
Resumen
Introducción. Las infecciones por Staphylococcus aureus y Staphylococcus coagulasa negativa multirresistentes a los antibióticos y asociadas con la atención en salud tienen un gran impacto epidemiológico por su alta morbimortalidad; además, se han relacionado con la formación de biopelículas, lo cual también se asocia con la resistencia a los antimicrobianos.
Objetivo. Determinar la resistencia a la meticilina y cuantificar la producción de biopelículas para establecer su posible relación con los aislamientos clínicos de S. aureus y Staphylococcus coagulasa negativa.
Materiales y métodos. Se estudiaron 11 cepas de S. aureus y 12 de Staphylococcus coagulasa negativa. La resistencia a la meticilina se determinó con discos de cefoxitina tomando como valores de referencia los estándares del Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI) de 2018. La producción de biopelícula se cuantificó con cristal violeta. Los genes mecA e icaADBC se identificaron mediante reacción en cadena de la polimerasa (PCR), y se hizo un análisis bivariado con la prueba de ji al cuadrado y el coeficiente V de Cramér, utilizando el programa SPSS™, versión 20.0.
Resultados. Nueve cepas de S. aureus fueron resistentes a la meticilina (SARM) y dos fueron sensibles. Ocho cepas de Staphylococcus coagulasa negativa fueron resistentes y cuatro fueron sensibles. El genotipo mecA se encontró en ocho de las nueve cepas de S. aureus y en seis de las ocho de Staphylococcus coagulasa negativa resistentes a meticilina. Todas las cepas formaron biopelícula. Diez cepas de S. aureus y 11 de Staphylococcus coagulasa negativa presentaron el genotipo icaADCB. No se encontró asociación entre la resistencia a meticilina y la formación de biopelícula.
Conclusiones. La cefoxitina es suficiente para determinar el fenotipo resistente a meticilina y se asoció con el genotipo mecA. Las cepas resistentes a la meticilina y poseedoras del gen mecA pueden presentar un mecanismo de resistencia alterno. Los dos grupos de cepas formadoras de biopelícula se relacionaron con la presencia del operón icaADCB. La formación de biopelícula y la resistencia a la meticilina se expresaron como características independientes en los dos grupos de cepas.
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Referencias bibliográficas
Guzmán-Blanco M, Mejía C, Isturiz R, Álvarez C, Bavestrello L, Gotuzzo E, et al. Epidemiology of meticillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Latin America. Int J Antimicrob Agents. 2009;34:304-8. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2009.06.005
Red Hospitalaria de Vigilancia Epidemiológica. Informe anual 2015. México: Secretaría de Salud; 2015.
Bannerman TL, Peacock SJ. Staphylococcus, Micrococcus, and other catalase-positive cocci. En: Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Landry ML, Pfaller MA, editors. Manual of clinical microbiology. 9th edition. Washington, D.C.: ASM Press; 2007. p. 390-411.
Bustos-Martínez JA, Hamdan-Partida A, Gutiérrez-Cárdenas. Staphylococcus aureus: la reemergencia de un patógeno en la comunidad. Rev Biomed. 2006;17:287-305.
Velázquez-Meza ME. Surgimiento y diseminación de Staphylococcus aureus meticilino resistente. Salud Pública de México. 2005;47:381-7.
Marín M, Gudiol F. Antibióticos beta-lactámicos. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2003;21:42-55. https://doi.org/10.1016/S0213-005X(03)72873-0
Chambers HF, Deleo FR. Waves of resistance: Staphylococcus aureus in the antibiotic era. Nat Rev Microbiol. 2009;7:629-41. https://doi.org/10.1038/nrmicro
Zhang HZ, Hackbart CJ, Chansky KM, Chambers HF. A proteolytic transmembrane pathway and resistance to β lactams in staphylococci. Science. 2001;291:1962-5. https://doi.org/10.1126/science.1055144
Hiramatsu K. Vancomycin resistant Staphylococcus aureus: A new model of antibiotic resistance. Lancet Infec Dis. 2001;1:147-55 https://doi.org/10.1016/S1473-3099(01)00091-3
Hernández JB, Novales GM. Biofilm. ¿Amenaza latente o factor de protección? Estado de arte. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2007;27:22-8.
Hall-Stoodley L, Costerton JW, Stoodley P. Bacterial biofilms: From the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2004;2:95-108. https://doi.org/10.1038/nrmicro821
Otto M. Staphylococcus epidermidis the “accidental” pathogen. Nat Rev Microbiol. 2009;7:555-67. https://doi.org/10.1038/nrmicro2182
Lasa I. Towards the identification of the common features of bacterial biofilm development. Int Microbiol. 2006;9:21-8.
O´Gara PJ. ica and beyond: Biofilms mechanism and regulation in Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett. 2007;270:179-88. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2007.00688.x
Cucarella C, Tormo MA, Knecht E, Amorena B, Lasa I, Foster TJ, et al. Expression of the biofilm associate protein interferes with host protein receptors of Staphylococcus aureus and alters the infective process. Infect Immun. 2002;70:3180-8. https://doi.org/10.1128/IAI.70.6.3180-3186.2002
Rodríguez-Martínez JM, Pascual Á. Actividad de los antimicrobianos en biocapas bacterianas. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2008;26:107-14. https://doi.org/10.1157/13115546
Clinical and Laboratory Standards Institute. Antimicrobial susceptibility testing standards. M02-A11, M07-A9, and M11-A8. Wayne: ILSI; 2014.
Stepanovic S, Vukovic D, Dakic I, Savic B, Svabic-Vlahovic M. A modified microtiter-plate test for quantification of staphylococcal biofilm formation. J Microbiol Methods. 2000;40:175-9. https://doi.org/10.1016/S0167-7012(00)00122-6
García-Barreto AA. Biofilm de Staphylococcus spp. de origen intrahospitalario: genes asociados (tesis). México: Instituto Politécnico Nacional; 2010.
Acosta-Pérez G, Rodríguez-Ábrego G, Longoria-Revilla E, Castro-Mussot ME. Evaluación de cuatro métodos para la detección de Staphylococcus aureus meticilino-resistente de muestras clínicas en un hospital regional. Salud Pública de México. 2012;54:1-6.
Gómez J, Gómez-Lus ML, Bas P, Ramos C, Cafini F, Maestre JR, et al. ¿Es la cuantificación del biofilm un elemento diferenciador en la patogenia de bacilos gramnegativos? Rev Esp Quimioter. 2013;26:97-102.
Ducel G, Fabry J, Nicolle L. Prevención de las infecciones nosocomiales. Guía práctica. Segunda edición. México: Organización Mundial de la Salud; 2003. p. 1-65.
Zayas-Tamayo ÁM, Barreras-García G, Álvarez-Varela E. Detección mediante el Sistema DIRAMIC de Staphylococcus aureus resistente a meticilina (SARM) y comparación con otros métodos utilizado en la práctica clínica. Revista CENIC Ciencias Biológicas. 2013;44. Fecha de consulta: 23 de noviembre de 2017. Disponible en: https://revista.cnic.edu.cu/revistaCB/sites/default/files/articulos/CB28-12.pdf
Corso A, Soloaga R, Faccone D, Gagetti P, Corbella S, Iglesias M, et al. Improvement of a latex agglutination test for the evaluation of oxacillin resistance in coagulase-negative staphylococci. Diagn Microbiol Infect Dis. 2004;50:223-5. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2004.06.005
Peeters E, Nelis HJ, Coenye T. Comparison of multiplex methods for quantification of microbial biofilms grown in microtiter plates. J Microbiol Methods. 2007;11:9-18. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2007.11.010
Arslan S, Ozkardes F. Slime production and antibiotic susceptibility in Staphylococci isolated from clinical samples. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2007;102:29-33. https://doi.org/10.1590/S0074-02762007000100004
Smith K, Pérez A, Ramage G, Lappin D, Gemmell CG, Lang S. Biofilm formation by Scottish clinical isolates of Staphylococcus aureus. J Med Microb. 2008;57:1018-23. https://doi.org/10.1099/jmm.0.2008/000968-0
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- Eduardo Rodríguez-Noriega, Gerardo León-Garnica, Santiago Petersen-Morfín, Héctor Raúl Pérez-Gómez, Esteban González-Díaz, Rayo Morfín-Otero, La evolución de la resistencia bacteriana en México, 1973-2013 , Biomédica: Vol. 34 (2014): Abril, Suplemento 1, Resistencia bacteriana
- Zinnia J. Molina-Garza, Lucio Galaviz-Silva, Pediculus capitis en niños de escuelas de la zona urbana de Nuevo León, México: análisis de factores asociados , Biomédica: Vol. 37 Núm. 3 (2017)
- Eduardo Bustos-Vázquez, Julián Alfredo Fernández-Niño, Claudia Iveth Astudillo-Garcia, Autopercepción de la salud, presencia de comorbilidades y depresión en adultos mayores mexicanos: propuesta y validación de un marco conceptual simple , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup.1 (2017): Suplemento 1, Alteraciones del sistema nervioso
- Analilia Solís-Hernández, Roger Iván Rodríguez-Vivas, María Dolores Esteve–Gassent, Sandra Luz Villegas-Pérez, Prevalencia de Borrelia burgdorferi sensu lato en roedores sinantrópicos de dos comunidades rurales de Yucatán, México , Biomédica: Vol. 36 (2016): Suplemento 1, Microbiología médica
- Claudio Alberto Dávila, Ana Melisa Pardo, Mortalidad por suicidios en Colombia y México: tendencias e impacto entre 2000 y 2013 , Biomédica: Vol. 36 Núm. 3 (2016)
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