Confiabilidad y concordancia de dos escalas de lectura de baciloscopias para clasificación y seguimiento del tratamiento con múltiples medicamentos de los pacientes con lepra
Resumen
Introducción. El diagnóstico de la lepra es clínico pero requiere métodos de clasificación para establecer el tratamiento y el pronóstico de los pacientes, acordes con su carga bacilar; ésta se detecta en extendidos de piel y se establece mediante la escala logarítmica de Ridley. En Colombia se emplea una escala semicuantitativa.
Objetivo. Establecer la reproducibilidad entre observadores para las dos escalas y establecer el nivel de correlación de la concordancia entre el índice bacilar obtenido con la escala colombiana y con la de Ridley, para evaluar cuánto se pueden intercambiar.
Materiales y métodos. Se estandarizó la lectura de las baciloscopias por dos lectores, con posterior evaluación del acuerdo entre observadores en un ensayo ciego. Cada lector cuantificó la carga bacilar de las muestras, usando la escala colombiana y la internacional. El grado de concordancia entre observadores se evaluó con el coeficiente kappa ponderado. El nivel de correlación de la concordancia entre las mediciones del índice bacilar, se estableció con el coeficiente de Lin.
Resultados. El coeficiente kappa ponderado entre observadores fue de 0,83, y de 0,85 para las escalas colombiana y la de Ridley, respectivamente. El coeficiente de Lin fue de 0,96 para la evaluación de correlación de la concordancia de los índices bacilares obtenidos con ambas escalas
Conclusiones. La concordancia entre observadores obtenida para ambas escalas fue excelente, al igual que la correlación de la concordancia de los índices bacilares calculados con los dos métodos. Con los puntos de corte establecidos, se obtuvo un nivel de concordancia excelente, lo que garantiza que las escalas son intercambiables a la hora de establecer si la carga bacilar es alta o baja.
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Referencias bibliográficas
2. World Health Organization. Global leprosy situation, 2009. Wkly Epidemiol Rec. 2009;84:333-40.
3. World Health Organization. Expert Committee on Leprosy. 6th Report, Technical Report Series 768. Geneva: WHO; 1988.
4. ILEP Federation. Improving skin smears & the reading of the bacteriological index in MDT leprosy control programmes. Guidelines and Practice Technical Bulletin. Issue No 3. 1990. Fecha de consulta: 18 de junio de 2010. Disponible en: http: http://www.ilep.org.uk/technical-advice/guidelines-practice/
5. Thangaraj RH, Yawalkar SJ. La lèpre pour les médeciens et le personnel paramédicale. Troisième édition révisée. Balá», Suisse: Ciba-Geigy SA; 1988. p. 16-23.
6. Ridley DS. Bacterial indices. In: Cochrane RG, Davey TF, editors. Leprosy in theory and practice. Bristol: John Wright and Sons Ltd.; 1964. p. 620-2.
7. Guerrero MI, León CI, Naranjo N, Orozco LC, Giraldo E, Camargo D, et al. El laboratorio en lepra: bacteriología y patología. Red Nacional de Laboratorios. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 1992.
8. Machin D, Campbell M, Fayers P, Pinol A. Sample size tables for clinical studies. Second edition. Oxford: Blackwell Science; 1997.
9. Cohen J. A coefficient of agreement for nominal scales. Educ Psychol Meas. 1960;20:37-46.
10. Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977;33:159-74.
11. Lin LI-K. A concordance correlation coefficient to evaluate reproducibility. Biometrics. 1989;45:255-68.
12. World Health Organization. Shortening duration of treatment of multibacillary leprosy. Wkly Epidemiol Rec. 1997; 72: 125-32.
13. Zweig MH, Campbell G. Receiver-operating characteristic (ROC) plots: A fundamental evaluation tool in clinical medicine. Clin Chem. 1993;39:561-77.
14. National Institute or Water and Atmospheric Research. Lin's concordance. Fecha de consulta: 30 de mayo de 2011. Disponible en: http://www.niwa.co.nz/our-services/online-services/statistical-calculators/lins-concordance.
15. Awofeso N. Inventory of skin smear practices in 6 leprosy control programmes in Nigeria. Lepr Rev. 1993;64:150-6.
16. de Rijk AJ, Nilsson T, Chonde M. Quality control of skin smear services in leprosy programmes: Preliminary experience with inter-observer comparison in routine services. Lepr Rev.1985;56:177-91.
17. Balagon MF, Cellona RV, Cruz E, Burgos JA, Abalos RM, Walsh GP, et al. Long-term relapse risk of multibacillary leprosy after completion of 2 years of multiple drug therapy (WHO-MDT) in Cebu, Philippines. Am J Trop Med Hyg. 2009;81:895-9.
18. Ferreira SM, Ignotti E, Senigalia LM, Silva DR, Gamba MA. Recurrence of leprosy cases in the State of Mato Grosso, Central-West Brazil. Rev Saude Publica. 2010;44:650-7.
19. Teixeira MA, Silveira VM, França ER. Characteristics of leprosy reactions in paucibacillary and multibacillary individuals attended at two reference centers in Recife, Pernambuco. Rev Soc Bras Med Trop. 2010;43:287-92.
20. van Veen NH, Meima A, Richardus JH. The relationship between detection delay and impairment in leprosy control: A comparison of patient cohorts from Bangladesh and Ethiopia. Lepr Rev. 2006;77:356-65.
21. Norman G, Joseph G, Richard J. Validity of the WHO operational classification and value of other clinical signs in the classification of leprosy. Int J Lepr Other Mycobact Dis. 2004;72:278-83.
22. Teixeira AC, Cruvinel DL, Roma FR, Luppino LF, Resende LH, Sousa T, et al. Evaluation of the agreement between clinical and laboratorial exams in the diagnosis of leprosy. Rev Soc Bras Med Trop. 2008;41(Suppl.2):48-55.
23. World Health Organization. Expert Committee on leprosy. 7th report. Technical Report Series, 874. Geneva: WHO; 1998.
24. Georgiev GD, McDougall AC. The bacteriological examination of slit-skin smears in leprosy control programmers using multiple drug therapy: A plea for radical changes in current operational methodology. Indian J Lepr. 1987;59:373-85.
25. Croft RP, Smith WC, Nicholls P, Richardus JH. Sensitivity and specificity of methods of classification of leprosy without use of skin smear examination. Int J Lepr Other Mycobact Dis. 1998;66:445-50.
26. Groenen G, Saha NG, Rashid MA, Hamid MA, Pattyn SR. Classification of leprosy under field conditions in Bangladesh. I. Usefulness of skin-smear examinations. Lepr Rev. 1995;66:126-33.
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