Abundancia, composición e infección natural de mosquitos Anopheles en dos regiones endémicas para malaria en Colombia
Resumen
Introducción. En Colombia hay tres especies de mosquitos Anopheles implicadas como vectores primarios en la transmisión de la malaria o paludismo; sin embargo, el rol local de algunas especies de Anopheles aún debe determinarse.
Objetivo. Determinar la abundancia, la composición y la infección natural de mosquitos anofelinos con Plasmodium spp. en dos regiones endémicas de malaria en Colombia.
Materiales y métodos. Se recolectaron mosquitos del género Anopheles usando los métodos de recolección con cebo humano y en reposo en corrales de ganado vacuno, en nueve localidades de dos regiones endémicas para malaria en Colombia. Los especímenes se identificaron morfológicamente y se confirmaron por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) de los polimorfismos en la longitud de los fragmentos de restricción (Restriction Fragment Length Polymorphism, RFLP) en el espaciador intergénico ribosómico nuclear 2 (Internal Transcribed Spacer, ITS-2) (PCR-RFLP-ITS2). Los especímenes se procesaron y analizaron mediante ELISA y PCR anidada basada en la subunidad pequeña del ARN ribosómico (small subunit ribosomal RNA, ssrRNA) para determinar la infección por Plasmodium.
Resultados. Se recolectaron 1.963 mosquitos Anopheles correspondientes a nueve especies. Anopheles nuneztovari fue la especie predominante (53,5 %), seguida por A. darlingi (34,5 %), A. triannulatus s.l. (6 %) y por otras especies (≈5,9 %). Tres especies se encontraron naturalmente infectadas con Plasmodium spp.: A. darlingi, A. nuneztovari y A. triannulatus s.l.
Conclusiones. La infección natural de A. darlingi y A. nuneztovari indica que estos vectores primarios siguen siendo actores principales en la transmisión de malaria en las localidades estudiadas de los departamentos del Valle del Cauca y Chocó. Además, el espécimen A. triannulatus s.l. infectado, recolectado en corrales de animales de la localidad estudiada en el departamento de Córdoba, indica que existe la necesidad de estudios futuros para establecer la importancia epidemiológica de esta especie dada su abundancia y comportamiento antropofílico oportunista.
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Referencias bibliográficas
World Health Organization. World Malaria Report. Geneva: WHO; 2015. Accessed: June 25, 2016. Available from: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/200018/1/9789241565158_eng.pdf
Instituto Nacional de Salud. Comportamiento de los eventos de vigilancia en salud pública. Enfermedades transmitidas por vectores. Malaria. Semana epidemiológica número 52 de 2015 (27 dic. - 02 ene.). Boletín Epidemiológico Semanal. 2015;52. Accessed: March 3, 2017. Available from: http://www.ins.gov.co/boletin-epidemiologico/Boletn%20Epidemiolgico/2015%20Boletin%20epidemiologico%20Semana%2052.pdf
González R, Carrejo N. Introducción al estudio taxonómico de Anopheles de Colombia. Claves y notas de distribución. Segunda edición. Cali: Universidad del Valle; 2009. p. 260.
Montoya-Lerma J, Solarte YA, Giraldo-Calderón GI, Quiñones ML, Ruiz-López F, Wilkerson RC, et al. Malaria vector species in Colombia - A review. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2011;106(Suppl.1):223-38. https://doi.org/10.1590/S0074-02762011000900028
Olano VA, Brochero HL, Sáenz R, Quiñones ML, Molina JA. Mapas preliminares de la distribución de especies de Anopheles vectores de malaria en Colombia. Biomédica. 2001;21:402-8.
Naranjo-Díaz N, Rosero D, Rua-Uribe G, Luckhart S, Correa M. Abundance, behavior and entomological inoculation rates of anthropophilic anophelines from a primary Colombian malaria endemic area. Parasit Vectors. 2013;6:61. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-61
Naranjo-Díaz N, Altamiranda M, Luckhart S, Conn JE, Correa MM. Malaria vectors in ecologically heterogeneous localities of the Colombian Pacific region. PLoS One. 2014;9: e103769. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0103769
Quiñones ML, Ruiz F, Calle DA, Harbach RE, Erazo HF, Linton Y. Incrimination of Anopheles (Nyssorhynchus) rangeli and An. (Nys.) oswaldoi as natural vectors of Plasmodium vivax in Southern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;101: 617-23. https://doi.org/10.1590/S0074-02762006000600007
Gómez GF, Bickersmith SA, González R, Conn JE, Correa MM. Molecular taxonomy provides new insights into Anopheles species of the Neotropical Arribalzagia series. PLoS One. 2015;10:e0119488. https://doi.org/:10.1371/journal.pone.0119488
Orjuela LI, Herrera M, Erazo H, Quiñones ML. Especies de Anopheles presentes en el departamento del Putumayo y su infección natural con Plasmodium. Biomédica. 2013;33: 42-52. https://doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619
Rosero DA, Naranjo-Díaz N, Álvarez N, Cienfuegos AV, Torres C, Luckhart S, et al. Colombian Anopheles triannulatus (Diptera: Culicidae) naturally infected with Plasmodium spp. ISRN Parasitol. 2013;2013:927453. https://doi.org/10.5402/2013/927453
Orjuela LI, Ahumada ML, Ávila I, Herrera S, Beier JC, Quiñones ML. Human biting activity, spatial-temporal distri-bution and malaria vector role of Anopheles calderoni in the southwest of Colombia. Malar J. 2015;14:256. https://doi.org/10.1186/s12936-015-0764-6
Instituto Geográfico Agustín Codazzi. Atlas de Colombia. Quinta edición. Bogotá: Imprenta Nacional de Colombia; 2002. p. 342.
Morrone JJ. Biogeographic areas and transition zones of Latin America and the Caribbean islands based on panbio-geographic and cladistic analyses of the entomofauna. Annu Rev Entomol. 2006;51:467-94. https://doi.org/10.1146/annurev.ento.50.071803.130447
Gutiérrez LA, Naranjo N, Jaramillo LM, Muskus C, Luckhart S, Conn JE, et al. Natural infectivity of Anopheles species from the Pacific and Atlantic Regions of Colombia. Acta Trop. 2008;107:99-105. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2008.04.019
Gutiérrez LA, González JJ, Gómez GF, Castro MI, Rosero DA, Luckhart S, et al. Species composition and natural infectivity of anthropophilic Anopheles (Diptera: Culicidae) in the states of Córdoba and Antioquia, Northwestern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104:1117-24. https://doi.org/10.1590/S0074-02762009000800008
Zapata MA, Cienfuegos AV, Quirós OI, Quiñones ML, Luckhart S, Correa MM. Discrimination of seven Anopheles species from San Pedro de Urabá, Antioquia, Colombia, by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism analysis of ITS sequences. Am J Trop Med Hyg. 2007;77:67-72. https://doi.org/10.4269/ajtmh.2007.77.67
Cienfuegos AV, Gómez GF, Córdoba LA, Luckhart S, Conn JE, Correa MM. Diseño y evaluación de metodolo-gías basadas en PCR-RFLP de ITS2 para la identificación molecular de mosquitos Anopheles spp. (Diptera: Culicidae) de la Costa Pacífica de Colombia. Rev Biomed. 2008;19: 35-44.
Wirtz RA, Burkot TR, Graves PM, Andre RG. Field evaluation of enzyme-linked immunosorbent assays for Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax sporozoites in mosquitoes (Diptera: Culicidae) from Papua New Guinea. J Med Entomol.1987;24:433-7.
Wirtz RA, Charoenvit Y, Burkot TR, Esser KM, Beaudoin RL, et al. Evaluation of monoclonal antibodies against Plasmodium vivax sporozoites for ELISA development. Med Vet Entomol. 1991;5:17-22. https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.1991.tb00515.x
Wirtz RA, Sattabongkot J, Hall T, Burkot TR, Rosenberg R. Development and evaluation of an enzyme-linked immu-nosorbent assay for Plasmodium vivax-VK247 sporozoites. J Med Entomol. 1992;29:854-7.
Wirtz RA, Zavala F, Charoenvit Y, Campbell GH, Burkot TR, Schneider I, et al. Comparative testing of monoclonal antibodies against Plasmodium falciparum sporozoites for ELISA development. Bull World Health Organ. 1987;65: 39-45.
Singh B, Bobogare A, Cox-Singh J, Snounou G, Abdullah MS, Rahman HA. A genus- and species-specific nested polymerase chain reaction malaria detection assay for epide-miologic studies. Am J Trop Med Hyg. 1999;60:687-92.
Rosero DA, Gutiérrez LA, Cienfuegos AV, Jaramillo LM, Correa MM. Optimización de un procedimiento de extracción de ADN para mosquitos anofelinos. Rev Colomb Entomol. 2010;36:260-3.
Cohuet A, Harris C, Robert V, Fontenille D. Evolutionary forces on Anopheles: What makes a malaria vector? Trends Parasitol. 2010;26:130-6. https://doi.org/10.1016/j.pt.2009. 12.001
Sierra DM, Vélez ID, Linton YM. Malaria vector Anopheles (Nyssorhynchus) nuneztovari comprises one genetic species in Colombia based on homogeneity of nuclear ITS2 rDNA. J Med Entomol. 2004;41:302-7. https://doi.org/10.1603/0022-2585-41.3.302
González R, Martínez LM. Nuevo registro de distribución altitudinal de Anopheles albimanus Wiedemann (Diptera: Culicidae). Boletín del Museo de Entomología. 2006;7:19-23.
Pinault LL, Hunter FF. New highland distribution records of multiple Anopheles species in the Ecuadorian Andes. Malar J. 2011;10:236. https://doi.org/10.1186/1475-2875-10-236.
Olano VA, Carrasquilla G, Méndez F. Transmisión de malaria urbana en Buenaventura, Colombia: aspectos ento-mológicos. Pan Am. Public Health. 1997;1:287-94. https://doi.org/10.1590/S1020-49891997000400005
Conde M, Pareja P, Orjuela L, Ahumada M, Durán S, Jara JA, et al. Larval habitat characteristics of the main malaria vectors in the most endemic regions of Colombia: Potential implications for larval control. Malar J. 2015;14:476. https://doi.org/10.1186/s12936-015-1002-y
Aycardi-Morinelli MP, Correa-Ochoa MM, Zárate-Peñata EdC, Padrón-Echenique C. Determinación de especies anofelinas en una localidad endémica de malaria en el depar-tamento de Córdoba, noroeste de Colombia. Entomotropica. 2016;31:294-301.
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- Elizabeth Borrero, Gabriel Carrasquilla, Neal Alexander, Descentralización y reforma: ¿cuál es su impacto sobre la incidencia de malaria en los municipios colombianos? , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Lorena I. Orjuela, Manuela Herrera, Holmes Erazo, Martha L. Quiñones, Especies de Anopheles presentes en el departamento del Putumayo y su infección natural con Plasmodium , Biomédica: Vol. 33 Núm. 1 (2013)
- Andrés López-Rubio, Juan David Suaza, Charles Porter, Sandra Uribe, Gabriel Bedoya, Iván Darío Vélez, Señal filogenética de la región Cytb-SertRNA-IG1-ND1 en Anopheles (Kerteszia) neivai Howard, Dyar & Knab, 1913 , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup. 2 (2017): Suplemento 2, Entomología médica, 2017
- Pablo Chaparro, Edison Soto, Julio Padilla, Daniel Vargas, Estimación del subregistro de casos de paludismo en diez municipios de la costa del Pacífico nariñense durante 2009 , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Pilar Jiménez, Jan E. Conn, Robert Wirtz, Helena Brochero, Anopheles (Díptera: Culicidae) vectores de malaria en el municipio de Puerto Carreño, Vichada, Colombia , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Airleth Sofía Díaz, Aura Isabel Sotelo, Catalina González-Uribe, Helena L. Brochero, Bionomía de Anopheles (Nyssorhynchus) albimanus (Diptera: Culicidae) en dos rancherías del pueblo wayúu, Riohacha, La Guajira, Colombia , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup. 2 (2017): Suplemento 2, Entomología médica, 2017
- Sandra Milena Barrera, Manuel Alberto Pérez, Angélica Knudson, Rubén Santiago Nicholls, Ángela Patricia Guerra, Genotipificación de Plasmodium falciparum por PCR múltiple por medio de los genes msp1, msp2 y glurp, en cuatro localidades de Colombia , Biomédica: Vol. 30 Núm. 4 (2010)
- Margarita Arboleda, María Fernanda Pérez, Diana Fernández, Luz Yaned Usuga, Miler Meza, Perfil clínico y de laboratorio de los pacientes con malaria por Plasmodium vivax, hospitalizados en Apartadó, Colombia , Biomédica: Vol. 32 (2012): Suplemento 1, Malaria
- Rosa Magdalena Uscátegui, Adriana M. Correa, Jaime Carmona-Fonseca, Cambios en las concentraciones de retinol, hemoglobina y ferritina en niños palúdicos colombianos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 2 (2009)
- Nicolás Jaramillo, David Alonso Calle, Martha Lucía Quiñones, Holmes Francisco Erazo, Discriminación por morfometría geométrica de once especies de Anopheles (Nyssorhynchus) presentes en Colombia , Biomédica: Vol. 28 Núm. 3 (2008)

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