Evaluación del efecto tóxico de la doramectina, la ivermectina y la eprinomectina sobre Triatoma infestans en un modelo de rata
Resumen
Introducción. La principal herramienta para el control de los triatominos, vectores de Trypanosoma cruzi, ha sido el uso masivo e intensivo de piretroides. La aparición de resistencia a estas moléculas ha planteado la necesidad de encontrar estrategias nuevas, alternativas y complementarias de control.
Objetivo. Evaluar el efecto tóxico de la ivermectina, la doramectina y la eprinomectina sobre Triatoma infestans y sus consecuencias en la alimentación con sangre en un modelo de roedor.
Materiales y métodos. Se alimentaron ninfas de quinto estadio de T. infestans en distintos momentos sobre ratas Wistar tratadas previamente con doramectina, ivermectina, eprinomectina o dimetilsulfóxido (excipiente de control), administrados tópicamente o por vía oral. Se determinó el efecto de cada endectocida y del dimeltilsulfóxido en la cantidad de sangre ingerida, el volumen de excreciones y el porcentaje de mortalidad.
Resultados. Únicamente la mortalidad de los insectos dependió del endectocida suministrado a las ratas y de la vía de administración utilizada. La doramectina causó mayor mortalidad (21,5 %) comparada con la ivermectina, la eprinomectina y el dimetilsulfóxido (16, 11 y 2,5 %, respectivamente), y la administración tópica fue más efectiva que la vía oral (23 Vs. 9,3 %).
Conclusión. Los resultados obtenidos demuestran el efecto tóxico de los tres endectocidas en T. infestans. Su utilización en animales domiciliarios o que viven en el eridomicilio podría ser una interesante estrategia complementaria de la aspersión con piretroides para el control de T. infestans.
Descargas
Referencias bibliográficas
Coura JR, Días, JC. Epidemiology, control and surveillance of Chagas disease: 100 years after its discovery. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104(Suppl.1):31-40. https://doi.org/10.1590/S0074-02762009000900006
Ventura-García L, Roura M, Pell C, Posada E, Gascón J, Aldasoro E, et al. Socio-cultural aspects of Chagas disease: A systematic review of qualitative research. PLoSNegl Trop Dis. 2013;12:7:e2410. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002410
Toso AM, Vial FU, Galanti N. Transmisión de la enfermedad de Chagas por vía oral. Rev Med Chile. 2011;139:258-66. https://doi.org/10.4067/S0034-98872011000200017
World Health Organization. Sustaining the drive to overcome the global impact of neglected tropical diseases: Second Who Report on Neglected Diseases. Geneva: WHO; 2013.
Salvatella R, Schofield J. Enfermedad de Chagas iniciativas para su control en Latinoamérica. Biomedicina. 2006;1:36-46.
Guarneri AA, Diotaiuti L, Gontijo NF, Gontijo AF, Pereira MH. Comparison of feeding behaviour of Triatoma infestans, Triatoma brasiliensis and Triatoma pseudomaculata in different hosts by electronic monitoring of the cibarial pump. J Insect Physiol. 2000;46:1121-7. https://doi.org/10.1016/S0022-1910(99)00222-X
Casabé N, Melgar F, Wood EJ, Zerba EN. Insecticidal activity of pyrethroids against Triatoma infestans. Int J Trop Insect Sci. 1988;9:233-36. https://doi.org/10.1017/S1742758400006044
World Health Organization. Chagas disease, interruption of transmission in Uruguay. Wkly Epidemiol Rec.1998;73:1-4.
World Health Organization. Chagas disease, interruption of transmission in Chile. Wkly Epidemiol Rec. 1999;2:9-11.
Gürtler RE, Cohen JE, Cecere MC, Lauricella MA, Chuit R, Segura EL. Influence of human and domestic animals on the household prevalence of Trypanosoma cruzi in Triatoma infestans populations in northwest Argentina. Am J Trop Med Hyg. 1998;58:748-58.
Mougabure-Cueto G, Picollo MI. Insecticide resistance in vector Chagas disease: Evolution, mechanisms and management. Acta Trop. 2015;149:70-85. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2015.05.014
Loza-Murguía M, Noireau F. Vectorial capacity of Triatoma guayasana (Wygodzinsky & Abalos) (Hemiptera: Reduviidae) compared with two other species of epidemic importance. Neotrop Entomol. 2010;39:799-809. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2010000500020
Dadé MM, Daniele MR, Silvestrini MP, Mestorino N. Eficacia in vitro de tres endectocidas frente a Triatoma infestans. Rev Cubana Med Trop. 2014;66:338-50.
Parri HR, Djamgoz MB, Holdendyel L, Walker RJ. An ionsensitive microelectrode study on the effect of a high concentration of ivermectin on chloride balance in the somatic muscle bag cells of Ascaris suum. Parasitology. 1993;106:421-7. https://doi.org/10.1017/S0031182000067172
Errecalde J, Mestorino N. Terapéutica de las ectoparasitosis. En: Fiel C, Nari A, editores. Enfermedades parasitarias de importancia clínica y productiva en rumiantes. Fundamentos epidemiológicos para su diagnóstico y control. Montevideo: Editorial Hemisferio Sur; 2013. p. 625-30.
Soderlund DM. Pyrethroids, knockdown resistance and sodium channels. Pest Manag Sci. 2008;64:610-16. https://doi.org/10.1002/ps.1574
Wilson ML. Avermectins in arthropod vector management-prospects and pitfalls. Parasitol Today. 1993;9:83-7. https://doi.org/10.1016/0169-4758(93)90210-7
Pinto J, Cáceres AG, Vega S, Martínez R, Náquira C. Fuentes de alimentación de Panstrongylus herreri (Hemiptera: Triatominae) capturados en Utcubamba, Amazonas-Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2008;25:179-84.
Calderón-Arguedas O, Chinchilla M, García F, Vargas M. Preferencias alimentarias de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduvíidae) procedente de la meseta central de Costa Rica a finales del siglo XX. Parasitol Día. 2001;25:3-4. https://doi.org/10.4067/S0716-07202001000300002
Schweigmann NJ, Alberti A, Pietrokovsky S, Conti O, Riarte A, Montoya S, et al. A new host of Trypanosoma cruzi from Jujuy, Argentina: Octodontomys gliroides (Gervais & D’Orbigny, 1844) (Rodentia, Octodontidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 1992;87:217-20. https://doi.org/10.1590/S0074-02761992000200008
Institute for Laboratory Animal Research. Guide for the care and use of laboratory animals. Eighth edition. Washington, D.C: The National Academies Press; 2011. p. 248.
Dadé M, Daniele M, Silvestrini M, Marín G, Mestorino N. Ivermectin efficacy against T. infestans in vivo using hen model. J Pharm Pharmacol. 2014;2:353-8.
Rubio C, Moncada LI, Rojas MA, García A. Comportamiento de Rhodnius robustus Larousse, 1927 (Hemiptera, Reduviidae) durante su alimentación en condiciones de laboratorio. Biomédica. 2013;33:205-13. https://doi.org/10.7705/biomedica.v33i2.743
Zeng Z, Andrew NW, Woda JM, Halley BA, Crouch LS, Wang RW. Role of cytochrome P450 isoforms in the metabolism of abamectin and ivermectin in rats. J Agr Food Chem. 1996;44:3374-8. https://doi.org/10.1021/jf960222
Zeng Z, Andrew NW, Green-Erwin ML, Halley BA. Fate of 40-epi-amino-40-deoxyavermectin B1. Drug Metab Disp. 1996;24:572-8.
Zeng Z, Andrew NW. Characterization of eprinomectin N-deacetylase in rats. Drug Metab Dispos. 1999;27:269-73.
Algunos artículos similares:
- Iveth J. González, Las metacaspasas y su rol en la vida y muerte de los parásitos protozoarios humanos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 3 (2009)
- Marlene Reyes, Víctor Manuel Angulo, Ciclo de vida de Triatoma dimidiata Latreille, 1811 (Hemiptera, Reduviidae) en condiciones de laboratorio: producción de ninfas para ensayos biológicos , Biomédica: Vol. 29 Núm. 1 (2009)
- Keila Torres, Francys Avendaño-Rangel, Eliécer Lizano, María Rojas, Claudina Rodríguez-Bonfante, Rafael Bonfante-Cabarcas, Elis Aldana, Evaluación de la estructura espacial de Triatoma maculata del centro-occidente de Venezuela y su viabilidad alimentado con sangre humana en condiciones de laboratorio , Biomédica: Vol. 30 Núm. 1 (2010)
- Nelson Grisales, Omar Triana, Víctor Angulo, Nicolás Jaramillo, Gabriel Parra-Henao, Francisco Panzera, Andrés Gómez-Palacio, Diferenciación genética de tres poblaciones colombianas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) mediante análisis molecular del gen mitocondrial ND4 , Biomédica: Vol. 30 Núm. 2 (2010)
- Marlene Reyes, Víctor Manuel Angulo, Claudia Magaly Sandoval, Efecto tóxico de b-cipermetrina, deltametrina y fenitrotión en cepas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) y Triatoma maculata (Erichson, 1848) (Hemiptera, Reduviidae) , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Corina María Arroyo, Lyda Esteban, Silvia Catalá, Víctor Manuel Angulo, Variación del fenotipo antenal de poblaciones del domicilio, peridomicilio y silvestres de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduviidae) en Santander, Colombia , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Andrea Arévalo, Julio César Carranza, Felipe Guhl, Jairo A. Clavijo, Gustavo Adolfo Vallejo, Comparación de los patrones de alimentación y defecación de Rhodnius colombiensis y Rhodnius prolixus (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) en condiciones de laboratorio , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Gustavo Adolfo Vallejo, Felipe Guhl, Julio César Carranza, Omar Triana, Gerardo Pérez, Paola Andrea Ortiz, Dairo Humberto Marín, Lina Marcela Villa, Jazmín Suárez, Isaura Pilar Sánchez, Ximena Pulido, Ingrid Bibiana Rodríguez, Leyder Elena Lozano, Daniel Alfonso Urrea, Fredy Arvey Rivera, César Cuba-Cuba, Jairo Alfonso Clavijo, Interacción tripanosoma-vector-vertebrado y su relación con la sistemática y la epidemiología de la tripanosomiasis americana , Biomédica: Vol. 27 Núm. 1esp (2007): Enfermedad de Chagas
- Lorenzo Cáceres, José Rovira, Rolando Torres, Arsenio García, José Calzada, Manuel De La Cruz, Caracterización de la transmisión de la malaria por Plasmodium vivax en la región fronteriza de Panamá con Costa Rica en el municipio de Barú, Panamá , Biomédica: Vol. 32 Núm. 4 (2012)
- Myriam C. López, Sofía Duque, Luis C. Orozco, Diana Camargo, Luis E. Gualdrón, Elvia Cáceres, Margarita Ronderos, Maritza Rey, Augusto Corredor, Inmunodiagnóstico de la infección chagásica por ELlSA , Biomédica: Vol. 19 Núm. 2 (1999)

Estadísticas de artículo | |
---|---|
Vistas de resúmenes | |
Vistas de PDF | |
Descargas de PDF | |
Vistas de HTML | |
Otras vistas |