Alteraciones de la morfología dendrítica neuronal en la corteza cerebral de ratones infectados con rabia: un estudio con la técnica de Golgi
Palabras clave:
rabia, virus de la rabia, corteza cerebral, neuronas, neuroanatomía, técnicas histológicas
Resumen
Introducción. Los signos neurológicos de la rabia son impresionantes; no obstante, el cerebro infectado sufre apenas cambios histológicos muy sutiles.Objetivo. Estudiar la morfología neuronal mediante la técnica de Golgi, en la corteza cerebral de ratones infectados con el virus de la rabia.
Materiales y métodos. Se inocularon ratones con virus silvestre de la rabia (virus ‘calle') de origen canino o con virus adaptado (virus ‘fijo') de la cepa CVS (challenge virus standard). Los animales se sacrificaron en la fase terminal de la enfermedad y se fijaron por perfusión con paraformaldehído. Los cerebros se procesaron con la técnica de Golgi, se obtuvieron cortes coronales de la corteza, se contaron las neuronas impregnadas en un área de 1 mm2, se midió el tamaño de sus cuerpos celulares y se tomaron fotografías en diferentes planos de profundidad.
Resultados. Se observaron alteraciones morfológicas notables en el soma y las dendritas de neuronas piramidales, con pérdida acentuada de espinas, en 12,9% de neuronas corticales de animales infectados con virus ‘calle' por vía intracerebral; en 8,2% de neuronas de ratones inoculados con este mismo virus por la ruta intramuscular y en 31,8% de neuronas en los animales inoculados con virus ‘fijo' por vía intramuscular. Además, en las muestras de material infectado el número de neuronas impregnadas por la técnica de Golgi fue considerablemente menor al observado en las muestras no infectadas.
Conclusiones. Estos resultados son evidencia de que el virus de la rabia sí puede inducir daño neuronal estructural. Además, esta infección aparentemente interfiere con los mecanismos de impregnación argéntica del método de Golgi.
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Referencias bibliográficas
1. Toro G, Raad J. Rabia. En: Toro G, Hernández CA,Raad J, editores. Instituto Nacional de Salud 1917-1997: una historia, un compromiso. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 1997. p.309-18.
2. Iwasaki Y, Tobita M. Pathology. En: Jackson AC,Wunner WH, editores. Rabies. San Diego: Academic Press; 2002. p.283-306.
3. Fu ZF, Jackson AC. Neuronal dysfunction and death in rabies virus infection. J Neurovirol. 2005;11:101-6.
4. Tsiang H. Pathophysiology of rabies virus infection of the nervous system. Adv Virus Res. 1993;42:375-412.
5. Braak H, Braak E. Golgi preparations as a tool in neuropathology with particular reference to investigations of the human telencephalic cortex. Prog Neurobiol. 1985;25:93-139.
6. Jagadha V, Becker L. Dendritic pathology: an overview of Golgi studies in man. Can J Neurol Sci. 1989;16:41-50.
7. Scheibel ME, Scheibel AB. The rapid Golgi method. Indian summer or renaissance? En: Nauta WJ, Ebbesson SO, editores. Contemporary research methods in neuroanatomy. New York: Springer-Verlag;
1970. p.1-11.
8. Millhouse OE. The Golgi methods. En: Heimer L, Robards MJ, editores. Neuroanatomical tract-tracing methods 1. New York: Plenum Press; 1981. p.311-44.
9. Fairén A, Smith-Fernández A, DeDiego I. Organización sináptica de neuronas morfológicamente identificadas: el método de Golgi en microscopía electrónica. En: Armengol JA, Miñano FJ, editores.
Bases experimentales para el estudio del sistema nervioso. Vol 1. Sevilla: Secretariado de Publicaciones de la Universidad de Sevilla; 1996. p.17-56.
10. Pannese E. The Golgi stain: invention, diffusion and impact on neurosciences. J Hist Neurosci. 1999;8:132-40.
11. Valverde F. Golgi atlas of the postnatal mouse brain. Viena: Springer-Verlag; 1998.
12. Torres-Fernández O. La técnica de impregnación argéntica de Golgi. Conmemoración del centenario del Premio Nóbel de Medicina (1906) compartido por Camillo Golgi y Santiago Ramón y Cajal. Biomédica. 2006;26:498-508.
13. Peters A, Palay SL, Webster H. The fine structure of the nervous system. Neurons and their supporting cells. New York: Oxford University Press; 1991.
14. Golgi C. Ueber die pathologische histologie der rabies experimentalis. Berliner Klinische Wochenschrift. 1894;31:325-31.
15. Páez A, Núñez C, García C, Boshell J. Epidemiología molecular de epizootias de rabia en Colombia, 1994-2002: evidencia de rabia humana y canina asociada a quirópteros. Biomédica. 2003;23:19-30.
16. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Efecto de la infección por el virus de la rabia sobre la expresión de parvoalbúmina, calbindina y calretinina en la corteza cerebral de ratones. Biomédica. 2004;24:63-78.
17. Torre-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Calbindin distribution in cortical and subcortical brain structures of normal and rabiesinfected mice. Int J Neurosci. 2005;115:1375-82.
18. Sarmiento L, Rodríguez G, de Serna C, Boshell J, Orozco L. Detection of rabies virus antigens in tissue: immunoenzimatic method. Patología. 1999;37:7-10.
19. DeFelipe J, Fairén A. Synaptic connections of an interneuron with axonal arcades in the cat visual cortex. J Neurocytol. 1988;17:313-23.
20. Feldman ML. Morphology of the neocortical pyramidal neuron. En: Peters A, Jones EG, editores. Cerebral cortex. Cellular components of the cerebral cortex. Vol. 1. New York: Plenum Press; 1984. p.123-200.
21. Armstrong DD. Rett syndrome neuropathology review 2000. Brain Dev. 2001;23 (Suppl.1):S72-S6.
22. Broadbelt K, Byne W, Jones LB. Evidence for a decrease in basilar dendrites of pyramidal cells in schizophrenic medial prefrontal cortex. Schizophr Res. 2002;58:75-81.
23. Montgomery MM, Dean AF, Taffs F, Stott EJ, Lantos PL, Luthert PJ. Progressive dendritic pathology in cynomolgus macaques infected with simian immunodeficiency virus. Neuropathol Appl Neurobiol.
1999;25:11-9.
24. Li XQ, Sarmento L, Fu ZF. Degeneration of neuronal processes after infection with pathogenic, but not attenuated, rabies viruses. J Virol. 2005;79:10063-8.
25. Liu Q, Xie F, Siedlak SL, Nunomura A, Honda K, Moreira PI, et al. Neurofilament proteins in neurodegenerative diseases. Cell Mol Life Sci. 2004;61:3057-75.
26. Miyamoto K, Matsumoto S. Comparative studies between pathogenesis of street and fixed rabies infection. J Exp Med. 1967;125:447-56.
27. Rodríguez G. Microscopía electrónica de la infección viral. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 1983. p.119-39.
28. Fairén A. Pioneering a golden age of cerebral microcircuits: the births of the combined Golgi-electron microscope methods. Neuroscience. 2005;136:607-14.
29. Angulo A, Merchán JA, Molina M. Golgi-Colonnier method: correlation of the degree of chromium reduction and pH change with quality of staining. J Histochem Cytochem. 1994;42:393-403.
30. Gibb R, Kolb B. A method for vibratome sectioning of Golgi-Cox stained whole rat brain. J Neurosci Methods. 1998;79:1-4.
31. Cook SC, Wellman CL. Chronic stress alters dendritic morphology in rat medial prefrontal cortex. J Neurobiol. 2004;60:236-48.
32. Martínez-Téllez R, Gómez-Villalobos M de J, Flores G. Alteration in dendritic morphology of cortical neurons in rats with diabetes mellitus induced by streptozotocin. Brain Res. 2005;1048:108-15.
33. Flores G, Alquicer G, Silva-Gómez AB, Zaldivar G, Stewart J, Quirion R, et al. Alterations in dendritic morphology of prefrontal cortical and nucleus accumbens neurons in post-pubertal rats after neonatal excitotoxic lesions of the ventral hippocampus. Neuroscience. 2005;133:463-70.
2. Iwasaki Y, Tobita M. Pathology. En: Jackson AC,Wunner WH, editores. Rabies. San Diego: Academic Press; 2002. p.283-306.
3. Fu ZF, Jackson AC. Neuronal dysfunction and death in rabies virus infection. J Neurovirol. 2005;11:101-6.
4. Tsiang H. Pathophysiology of rabies virus infection of the nervous system. Adv Virus Res. 1993;42:375-412.
5. Braak H, Braak E. Golgi preparations as a tool in neuropathology with particular reference to investigations of the human telencephalic cortex. Prog Neurobiol. 1985;25:93-139.
6. Jagadha V, Becker L. Dendritic pathology: an overview of Golgi studies in man. Can J Neurol Sci. 1989;16:41-50.
7. Scheibel ME, Scheibel AB. The rapid Golgi method. Indian summer or renaissance? En: Nauta WJ, Ebbesson SO, editores. Contemporary research methods in neuroanatomy. New York: Springer-Verlag;
1970. p.1-11.
8. Millhouse OE. The Golgi methods. En: Heimer L, Robards MJ, editores. Neuroanatomical tract-tracing methods 1. New York: Plenum Press; 1981. p.311-44.
9. Fairén A, Smith-Fernández A, DeDiego I. Organización sináptica de neuronas morfológicamente identificadas: el método de Golgi en microscopía electrónica. En: Armengol JA, Miñano FJ, editores.
Bases experimentales para el estudio del sistema nervioso. Vol 1. Sevilla: Secretariado de Publicaciones de la Universidad de Sevilla; 1996. p.17-56.
10. Pannese E. The Golgi stain: invention, diffusion and impact on neurosciences. J Hist Neurosci. 1999;8:132-40.
11. Valverde F. Golgi atlas of the postnatal mouse brain. Viena: Springer-Verlag; 1998.
12. Torres-Fernández O. La técnica de impregnación argéntica de Golgi. Conmemoración del centenario del Premio Nóbel de Medicina (1906) compartido por Camillo Golgi y Santiago Ramón y Cajal. Biomédica. 2006;26:498-508.
13. Peters A, Palay SL, Webster H. The fine structure of the nervous system. Neurons and their supporting cells. New York: Oxford University Press; 1991.
14. Golgi C. Ueber die pathologische histologie der rabies experimentalis. Berliner Klinische Wochenschrift. 1894;31:325-31.
15. Páez A, Núñez C, García C, Boshell J. Epidemiología molecular de epizootias de rabia en Colombia, 1994-2002: evidencia de rabia humana y canina asociada a quirópteros. Biomédica. 2003;23:19-30.
16. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Efecto de la infección por el virus de la rabia sobre la expresión de parvoalbúmina, calbindina y calretinina en la corteza cerebral de ratones. Biomédica. 2004;24:63-78.
17. Torre-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Calbindin distribution in cortical and subcortical brain structures of normal and rabiesinfected mice. Int J Neurosci. 2005;115:1375-82.
18. Sarmiento L, Rodríguez G, de Serna C, Boshell J, Orozco L. Detection of rabies virus antigens in tissue: immunoenzimatic method. Patología. 1999;37:7-10.
19. DeFelipe J, Fairén A. Synaptic connections of an interneuron with axonal arcades in the cat visual cortex. J Neurocytol. 1988;17:313-23.
20. Feldman ML. Morphology of the neocortical pyramidal neuron. En: Peters A, Jones EG, editores. Cerebral cortex. Cellular components of the cerebral cortex. Vol. 1. New York: Plenum Press; 1984. p.123-200.
21. Armstrong DD. Rett syndrome neuropathology review 2000. Brain Dev. 2001;23 (Suppl.1):S72-S6.
22. Broadbelt K, Byne W, Jones LB. Evidence for a decrease in basilar dendrites of pyramidal cells in schizophrenic medial prefrontal cortex. Schizophr Res. 2002;58:75-81.
23. Montgomery MM, Dean AF, Taffs F, Stott EJ, Lantos PL, Luthert PJ. Progressive dendritic pathology in cynomolgus macaques infected with simian immunodeficiency virus. Neuropathol Appl Neurobiol.
1999;25:11-9.
24. Li XQ, Sarmento L, Fu ZF. Degeneration of neuronal processes after infection with pathogenic, but not attenuated, rabies viruses. J Virol. 2005;79:10063-8.
25. Liu Q, Xie F, Siedlak SL, Nunomura A, Honda K, Moreira PI, et al. Neurofilament proteins in neurodegenerative diseases. Cell Mol Life Sci. 2004;61:3057-75.
26. Miyamoto K, Matsumoto S. Comparative studies between pathogenesis of street and fixed rabies infection. J Exp Med. 1967;125:447-56.
27. Rodríguez G. Microscopía electrónica de la infección viral. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 1983. p.119-39.
28. Fairén A. Pioneering a golden age of cerebral microcircuits: the births of the combined Golgi-electron microscope methods. Neuroscience. 2005;136:607-14.
29. Angulo A, Merchán JA, Molina M. Golgi-Colonnier method: correlation of the degree of chromium reduction and pH change with quality of staining. J Histochem Cytochem. 1994;42:393-403.
30. Gibb R, Kolb B. A method for vibratome sectioning of Golgi-Cox stained whole rat brain. J Neurosci Methods. 1998;79:1-4.
31. Cook SC, Wellman CL. Chronic stress alters dendritic morphology in rat medial prefrontal cortex. J Neurobiol. 2004;60:236-48.
32. Martínez-Téllez R, Gómez-Villalobos M de J, Flores G. Alteration in dendritic morphology of cortical neurons in rats with diabetes mellitus induced by streptozotocin. Brain Res. 2005;1048:108-15.
33. Flores G, Alquicer G, Silva-Gómez AB, Zaldivar G, Stewart J, Quirion R, et al. Alterations in dendritic morphology of prefrontal cortical and nucleus accumbens neurons in post-pubertal rats after neonatal excitotoxic lesions of the ventral hippocampus. Neuroscience. 2005;133:463-70.
Cómo citar
1.
Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE. Alteraciones de la morfología dendrítica neuronal en la corteza cerebral de ratones infectados con rabia: un estudio con la técnica de Golgi. Biomed. [Internet]. 1 de diciembre de 2007 [citado 4 de abril de 2025];27(4):605-13. Disponible en: https://revistabiomedicaorg.biteca.online/index.php/biomedica/article/view/177
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- Andrés Páez, Constanza Nuñez, Clemencia García, Jorge Boshell, Epidemiología molecular de epizootias de rabia en Colombia, 1994-2002: evidencia de rabia humana y canina asociada a quirópteros. , Biomédica: Vol. 23 Núm. 1 (2003)
- María Belén Jaimes, Diana C. Cáceres, Fernando de la Hoz, Camilo Gutiérrez, Diana Herrera, Jairo Pinilla, Alexandra Porras, Fabio Rodríguez, Martha Velandia, Factores de riesgo para infección respiratoria aguda baja grave en Bogotá, 2001. , Biomédica: Vol. 23 Núm. 3 (2003)
- Oscar Eugenio Sierra, María Antonia Gaona de Hernández, Gloria Janneth Rey, Determinación de la permeabilidad viral de los condones de membrana de poliolefina al bacteriófago phi chi 174. , Biomédica: Vol. 25 Núm. 4 (2005)
- María Elsa Correal, Juan Esteban Marthá, Rodrigo Sarmiento, Influencia de la variabilidad climática en las enfermedades respiratorias agudas en Bogotá , Biomédica: Vol. 35 (2015): Agosto, Suplemento 2, Salud y contaminantes ambientales
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Publicado
2007-12-01
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