Frecuencia de estrongiloidiasis y factores asociados: análisis de 13 años de resultados de laboratorio en un hospital de tercer nivel de Honduras, 2010-2022
Resumen
Introducción. La detección de estrongiloidiasis depende del método de diagnóstico utilizado y la población estudiada. Dado que en Honduras hay pocos estudios poblacionales, el análisis de los datos de laboratorio puede generar información que ayude a entender esta parasitosis.
Objetivo. Estimar la frecuencia e identificar los factores asociados a la estrongiloidiasis mediante el análisis de los registros de laboratorio del Servicio de Parasitología del Hospital Escuela en Tegucigalpa (Honduras) durante el periodo 2010-2022.
Materiales y métodos. Se llevó a cabo un estudio descriptivo, transversal y analítico. El diagnóstico de laboratorio consistió en el análisis de muestras de heces con los métodos directo y Baermann modificado. Se estimaron frecuencias y porcentajes, y la asociación estadística se calculó con razón de prevalencia e intervalos de confianza del 95 %. Se utilizaron los programas R, versión 4.2.0, y el paquete epiR, versión 2.0.46, para ejecutar los análisis estadísticos.
Resultados. La frecuencia general de estrongiloidiasis fue 0,29 % (112/38.085). Dicha frecuencia de detección fue mayor con el método de Baermann modificado (0,87 %; 40/4.575), entre pacientes masculinos (0,44 %; 70/15.758). También fue mayor en el rango de edad 20-40 años (0,41%; 28/6.886) por examen directo y entre los 41-61 años (1,14%; 14/1.232) con el método de Baermann modificado. Entre los factores asociados con la estrongiloidiasis se encontraron: edad entre los 20 y los 61 años (RP=2,26; IC 95%=1,53-3,31), sexo masculino (RP=2,34; IC 95% =1,60-3.44), moco (RP=1,86; IC 95%=1,22-2,83) y cristales de Charcot-Leyden en heces (RP=8,47, IC 95%=5,14-13,96), heces líquidas (RP=2,39, IC 95%=1,55-3,68) y otras helmintiasis (RP=6,73, IC 95%=3,98-11,38). Como factores asociados a los casos detectados con el método de Baermann modificado están consulta externa (RP=4,21, IC 95%=1,91-9,28) y heces formadas (RP=3,99, IC 95%=1,94-8,19).
Conclusiones. El método de Baermann modificado aumentó la frecuencia de detección de estrongiloidiasis casi cuatro veces. La mayoría de los casos se distribuyeron entre pacientes masculinos adultos. Los casos diagnosticados exclusivamente con el método de Baermann modificado tuvieron diferencias con los casos diagnosticados por examen directo. Es necesario realizar estudios poblacionales.
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Referencias bibliográficas
Luvira V, Siripoon T, Phiboonbanakit D, Somsri K, Watthanakulpanich D, Dekumyoy P. Strongyloides stercoralis: A neglected but fatal parasite. Trop Med Infect Dis. 2022;7:310. https://doi.org/10.3390/tropicalmed7100310
Buonfrate D, Bisanzio D, Giorli G, Odermatt P, Fürst T, Greenaway C, et al. The global prevalence of Strongyloides stercoralis infection. Pathogens. 2020;9:468. https://doi.org/10.3390/pathogens9060468
Buonfrate D, Mena MA, Angheben A, Requena-Mendez A, Muñoz J, Gobbi F, et al. Prevalence of strongyloidiasis in Latin America: A systematic review of the literature. Epidemiol Infect. 2015;143:452-60. https://doi.org/10.1017/S0950268814001563
Ketzis J. Limitations to the adoption of a standardized Strongyloides stercoralis diagnostic method: Case study in the Caribbean. Acta Tropica. 2017;170:178-83. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2017.03.003
Requena-Méndez A, Chiodini P, Bisoffi Z, Buonfrate D, Gotuzzo E, et al. The laboratory diagnosis and follow up of strongyloidiasis: A systematic review. PLoS Negl Trop Dis. 2013;7:e2002. http://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002002
Martins-de Paula F, de Mello-Malta F, Duarte-Marques P, Barnabé-Sitta R, Rebello-Pinho JR, Borges-Gryschek R, et al. Molecular diagnosis of strongyloidiasis in tropical areas: A comparison of conventional and real-time polymerase chain reaction with parasitological methods. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2015;110:272-4. http://doi.org/10.1590/0074-02760140371
Asundi A, Beliavsky A, Liu X, Akaberi A, Schwarzer G, Bisoffi Z, et al. Prevalence of strongyloidiasis and schistosomiasis among migrants: A systematic review and metaanalysis. Lancet Glob Health. 2019;7:e236-48. https://doi.org/10.1016/S2214-109X(18)30490-X
Nutman T. Human infection with Strongyloides stercoralis and other related Strongyloides species. Parasitology. 2017;144:263-73. https://doi.org/10.1017/S0031182016000834
Czeresnia J, Weiss L. Strongyloides stercoralis. Lung. 2022;200:141-8. https://doi.org/10.1007/s00408-022-00528-z
Kaminsky RG. Guía de enfermedades parasitarias prevalentes en Honduras. Tegucigalpa, Honduras: Imprenta Honduras; 2019.
Mejia-Torres RE, Franco-Garcia D, Fontecha G, Hernandez-Santana A, Singh P, Mancero-Bucheli ST, et al. Prevalence and intensity of soil-transmitted helminthiasis, prevalence of malaria and nutritional status of school going children in Honduras. PLoS Negl Trop Dis. 2014;8:e3248. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003248
Kaminsky RG. Estrongiloidiasis diseminada en una paciente viviendo con SIDA en Honduras. Rev Med Hondur. 2005;73:34-9.
Rivas-Godoy AF, Izaguirre-González AI, Maradiaga-Reyes EF, Bu-Figueroa E, García- Aguilar J. Estrongiloidiasis diseminada en una paciente con infección por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH). Med Int Mex. 2018;34:973-7. https://doi.org/10.24245/mim. v34i6.1978
García J, López W, Alger J, Matute ML, Kaminsky RG. Diagnóstico parasitológico de laboratorios clínicos públicos y privados de Tegucigalpa, Honduras: ¿Capacidad de Respuesta? Rev Med Hondur. 2014;82:148-54.
Kaminsky RG. Manual de Parasitología. Técnicas para laboratorio de Atención Primaria de Salud y para el diagnóstico de las Enfermedades Infecciosas Desatendidas. Tercera edición. Tegucigalpa: Imprenta Honduras; 2014.
Rugai E, Mattos T, Brisola AP. Nova Técnica para isolar larvas de nematoides das fezes, modificacão do metodo da Baermann. Rev Inst Adolfo Lutz. 1954;14:5-8. https://doi.org/10.53393/rial.1954.v14.33246
García J, Alger J. Método de Baermann y el diagnóstico de estrongiloidiasis. Rev Med Hondur. 2022;90:158. https://doi.org/10.5377/rmh.v90i2.14660
R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing; 2022.
Stevenson M, Nunes ESwcfT, Heuer C, Marshall J, Sanchez J, Thornton R, et al. epiR: Tools for the analysis of epidemiological data. R package version 2.0.46. Fecha de consulta: 27 de enero del 2023. Available in: https://CRAN.R-project.org/package=epiR
Schär F, Trostdorf U, Giardina F, Khieu V, Muth S, Marti H, et al. Strongyloides stercoralis: Global distribution and risk factors. PLoS Negl Trop Dis. 2013;7:e2288. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002288
Kaminsky RG, Reyes-García S, Zambrano L. Unsuspected Strongyloides stercoralis infection in hospital patients with comorbidity in need of proper management. BMC Infect Dis. 2016;16:98. https://doi.org/10.1186/s12879-016-1424-3
Kaminsky RG. Actualización estadística sobre parasitismo intestinal. Resultados de laboratorio, Hospital Escuela, Honduras. Rev Med Hond. 2002;70:57-69.
Kaminsky RG. Aspectos epidemiológicos y conceptuales de parasitosis intestinales en el Hospital Regional de Tela, Honduras. Rev Med Hondur. 2012;80:90-5.
Kaminsky RG, Soto RJ, Campa A, Baum M. Intestinal parasitic infections and eosinophilia in a human immune deficiency virus-positive population in Honduras. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2004;99:773-8. https://doi.org/10.1590/S0074-02762004000700020
Bouza-Mora L, Rodríguez-Masís D, Hernández-Chavarría F, Machado L. Strongyloides stercoralis en pacientes psiquiátricos. Rev Costarric Cienc Med. 2004;25:49-53.
Rivero-Rodríguez Z, Hernández A, Bracho A, Salazar S, Villalobos R. Prevalencia de microsporidios intestinales y otros enteroparásitos en pacientes con VIH positivo de Maracaibo, Venezuela. Biomédica. 2013;33:538-45. https://doi.org/10.7705/biomedica.v33i4.1468
Ortiz-Martínez S, Ramos-Rincón JM, Vásquez-Chasnamote ME, Gamboa-Paredes ON, Arista-Flores KM, Espinoza-Venegas LA, et al. Prevalence of strongyloidiasis in Peru: systematic review and meta-analysis. BMC Infect Dis. 2021;21:755. https://doi.org/10.1186/s12879-021-06441-9
Pereira Vieira Barreto NM, Brito Farias MM, Oliveira C de L, Almeida Costa Araujo W, Rios Grassi MF, Nascimento de Souza J, et al. Evaluation of Strongyloides stercoralis infection in patients with HTLV-1. Biomédica. 2022;42:31-40. https://doi.org/10.7705/biomedica.5888
Naves MM, Costa-Cruz JM. High prevalence of Strongyloides stercoralis infection among the elderly in Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2013;55:309-13. https://doi.org/10.1590/S0036-46652013000500003
Rodrigues-Machado E, Costa-Cruz JM. Strongyloides stercoralis and other enteroparasites in children at Uberlândia City, State of Minas Gerais, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1998;93:161-4. https://doi.org/10.1590/S0074-02761998000200004
Prasongdee T, Laoraksawong P, Kanarkard W, Kraiklang R, Sathapornworachai K, Naonongwai S, et al. An eleven-year retrospective hospital-based study of epidemiological data regarding human strongyloidiasis in northeast Thailand. BMC Infect Dis. 2017;17:627. https://doi.org/10.1186/s12879-017-2723-z
Jongwutiwes U, Waywa D, Silpasakorn S, Wanachiwanawin D, Suputtamongkol Y. Prevalence and risk factors of acquiring Strongyloides stercoralis infection among patients attending a tertiary hospital in Thailand. Pathog Glob Health. 2014;108:137-40. https://doi.org/10.1179/2047773214Y.0000000134
Chankongsin S, Wampfler R, Ruf MT, Odermatt P, Marti H, Nickel B, et al. Strongyloides stercoralis prevalence and diagnostics in Vientiane, Lao People’s Democratic Republic. Infect Dis Poverty. 2020;9:133. https://doi.org/10.1186/s40249-020-00750-y
Ashiri A, Rafiei A, Beiromvand M, Khanzadeh A, Alghasi A. Screening of Strongyloides stercoralis infection in high‑risk patients in Khuzestan Province, Southwestern Iran. Parasit Vectors. 2021;14:37. https://doi.org/10.1186/s13071-020-04549-6
Baker E, Ming D, Choudhury Y, Rahman S, Smith P, Muñoz J, et al. High Prevalence of Strongyloides among South Asian migrants in primary care-associations with eosinophilia and gastrointestinal symptoms. Pathogens. 2020;9:103. https://doi.org/10.3390/pathogens9020103
Winnicki W, Eder M, Mazal P, Mayer F, Sengölge G, Wagner L. Prevalence of Strongyloides stercoralis infection and hyperinfection syndrome among renal allograft recipients in Central Europe. Sci Rep. 2018;8:15406. https://doi.org/10.1038/s41598-018-33775-3
Guevara AG, Anselmi M, Bisoffi Z, Prandi R, Márquez M, Silva R, et al. Mapping the prevalence of Strongyloides stercoralis infection in Ecuador: A serosurvey. Am J Trop Med Hyg. 2020;102:346-9. https://doi.org/10.4269/ajtmh.19-0565
Requena-Méndez A, Salas-Coronas J, Salvador F, Gomez-Junyent J, Villar-Garcia J, Santin M, et al. High Prevalence of Strongyloidiasis in Spain: A Hospital-Based Study. Pathogens. 2020;9:109. https://doi.org/10.3390/pathogens9020107
Kaminsky RG. Validación del método de Baermann en vaso de sedimentación. Ciencia y Tecnología. 1992;14:12-8.
Kaminsky RG. Evaluation of Three Methods for Laboratory Diagnosis of Strongyloides stercoralis Infection. J Parasitol. 1993;79:277-80.
Fleitas PE, Travacio M, Martí-Soler H, Socías ME, López WR, Krolewiecki AJ. The Strongyloides stercoralis-hookworms association as a path to the estimation of the global burden of strongyloidiasis: A systematic review. PLoS Negl Trop Dis. 2020;14:e0008184. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0008184
Ueki S, Miyabe Y, Yamamoto Y, Fukuchi M, Hirokawa M, Spencer LA, et al. Charcot-Leyden crystals in eosinophilic inflammation: Active cytolysis leads to crystal formation. Curr Allergy Asthma Rep. 2019;19:35. https://doi.org/10.1007/s11882-019-0868-0. Erratum in: Curr Allergy Asthma Rep. 2019 Jul 13;19:38.
Secretaría de Salud de Honduras. Protocolo de manejo clínico del paciente adulto con COVID-19 según las etapas de la enfermedad en las Redes de Servicios de Salud. Tegucigalpa, Honduras; mayo 2020. Fecha de consulta: 8 de abril 2023. Disponible en: http://www.bvs.hn/COVID-19/Protocolo%20de%20Manejo%20Clinico%20del%20Paciente%20Adulto%20con%20COVID-19%20segun%20las%20etapas%20de%20la%20enfermedad%20en%20las%20redes%20de%20servicio%20de%20Salud%20Segunda%20Version.pdf
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- Jorge García , Jackeline Alger, Ramón Jeremías Soto, Parasitosis por Apicomplexa intestinales en población hospitalaria en Honduras, 2013-2019 , Biomédica: Vol. 41 Núm. 4 (2021)
- Briana Beltrán, Dione Benjumea-Bedoya, Jackeline Alger , Factores que afectan la cobertura del programa de tuberculosis en el primer nivel de atención en Honduras , Biomédica: Vol. 42 Núm. 2 (2022)

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