Evaluación microscópica y molecular de Strongyloides venezuelensis en un ciclo de vida experimental utilizando ratas Wistar
Resumen
Introducción. Strongyloides venezuelensis es un nematodo cuyo huésped natural son las ratas. Se utiliza como modelo para la investigación de la estrongiloidiasis humana producida por S. stercoralis. Esta última es una enfermedad tropical desatendida que afecta al Ecuador, donde no existen planes específicos para mitigar esta parasitosis.
Objetivo. Evaluar experimentalmente los estadios del ciclo de vida de S. venezuelensis utilizando ratas Wistar.
Materiales y métodos. Se emplearon ratas Wistar macho para replicar el ciclo biológico natural de S. venezuelensis y describir sus características morfométricas y su desarrollo parasitario. Además, se cuantificó la producción de huevos por gramo de heces mediante dos técnicas de diagnóstico y valoración de carga parasitaria: Kato-Katz y qPCR.
Resultados. Se obtuvieron estadios larvarios viables (L1, L2, L3) hasta las 96 horas del cultivo fecal. En el duodeno se establecieron hembras partenogenéticas a partir del quinto día de la infección. Se observaron huevos fértiles en el tejido intestinal inspeccionado y en las heces frescas, en las que el pico de producción ocurrió al octavo día de la infección. A diferencia del método Kato-Katz, la qPCR detectó ADN parasitario en días que usualmente no se reportan.
Conclusiones. La migración larvaria de S. venezuelensis dentro del ratón en un ambiente experimental fue equivalente al descrito en un ciclo biológico natural. El método cuantitativo de Kato-Katz dio resultados inmediatos a más bajo costo, pero la qPCR tuvo mayor precisión diagnóstica. Este ciclo de vida experimental puede usarse como una herramienta para el estudio de la estrongiloidiasis u otras nematodiasis similares.
Descargas
Referencias bibliográficas
Buonfrate D, Mena MA, Angheben A, Requema-Méndez A, Muñoz J, Gobbi F, et al. Prevalence of strongyloidiasis in Latin America: A systematic review of the literature.
Epidemiol Infect. 2015;143:452-60. https://doi.org/10.1017/S0950268814001563
Viney ME, Lok JB. The biology of Strongyloides spp. Wormbook: The online review of C. elegans biology. 2015:1-17. Access date: 11-18-2019. Available from: https://doi.org/10.1895/wormbook.1.141.2
Jacobsen KH, Ribeiro PS, Quist BK, Rydbeck BV. Prevalence of intestinal parasites in young Quichua children in the highlands of rural Ecuador. J Health Popul Nutr. 2007;25:399-405.
Reyes-Chacón JA. Evaluación del RT-PCR en el diagnóstico de 6 parásitos intestinales en un área con parasitismo de baja intensidad en el trópico, Ecuador. Quito: Universidad San Francisco de Quito; 2012. Available from: https://repositorio.usfq.edu.ec/handle/23000/2043
Júnior AF, Gonçalves-Pires MR, Silva DA, Gonçalves ALR, Costa-Cruz JM. Parasitological and serological diagnosis of Strongyloides stercoralis in domesticated dogs from southeastern Brazil. Vet Parasitol. 2006;136:137-45. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.10.022
Mati VLT, Raso P, de Melo AL. Strongyloides stercoralis infection in marmosets: Replication of complicated and uncomplicated human disease and parasite biology. Parasit Vectors. 2014;7:579. https://doi.org/10.1186/s13071-014-0579-2
Nutman TB. Human infection with Strongyloides stercoralis and other related Strongyloides species. Parasitology. 2017;144:263-73. https://doi.org/10.1017/S0031182016000834
Ruano AL. Óxido nítrico como modulador de la estrongiloidosis. Salamanca: Universidad de Salamanca; 2008. Available from: https://dialnet.unirioja.es/servlet/tesis?codigo=102628
Viney M, Kikuchi T. Strongyloides ratti and S. venezuelensis-rodent models of Strongyloides infection. Parasitology. 2017;144:285-94. https://doi.org/10.1017/S0031182016000020
Chaves LA, Gonçalves ALR, Paula FM, Silva NM, Silva CV, Costa-Cruz JM, et al. Comparison of parasitological, immunological and molecular methods for evaluation of faecal samples of immunosuppressed rats experimentally infected with Strongyloides venezuelensis. Parasitology. 2015;142:1715-21. https://doi.org/10.1017/S0031182015001298
Marques PD, Malta FM, Meisel DMCL, Corral MA, Pinho JR, Costa-Cruz JM, et al. Diagnosis of the strongyloid nematode Strongyloides venezuelensis in experimentally infected rats. J Helminthol. 2016;90:422-7. https://doi.org/10.1017/S0022149X15000528
Viney M. Strongyloides. Parasitology. 2017;144:259-62. https://doi.org/10.1017/S0031182016001773
Bosqui LR, Marques PD, de Melo GB, Gonçalves-Pires MR, Malta FM, Pavanelli WR, et al. Molecular and immune diagnosis: Further testing for human strongyloidiasis. Mol Diagn Ther. 2018;22:485-91. https://doi.org/10.1007/s40291-018-0340-1
Organización Mundial de la Salud. Medios auxiliares para el diagnóstico de las parasitosis intestinales. Ginebra: OMS; 1994. Available from: https://www.paho.org/es/documentos/medios-auxiliares-para-diagnostico-parasitosis-intestinales
Girard de Kaminsky R. Métodos para laboratorios de atención primaria de salud. Segunda edición. Tegucigalpa: Universidad Nacional Autónoma de Honduras y Hospital-Escuela; 2003. Available from: http://www.bvs.hn/Honduras/pdf/Manual%20Parasitologia%202007.pdf
Rugai E, Mattos T, Brisola AP. A new technic for the isolation of nematode larvae from faeces; modification of Baermann’s method. Rev Inst Adolfo Lutz. 1954;14:5-8.
Verweij JJ, Canales M, Polman K, Ziem J, Brienen EAT, Polderman AM, et al. Molecular diagnosis of Strongyloides stercoralis in faecal samples using real-time PCR. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2009;103:342-46. https://doi.org/10.1016/j.trstmh.2008.12.001
Beaver PCh, Jung RC, Cupp EW. Rhabditida: Strongyloides y formas relacionadas. Parasitología clínica de Craig Faust. Tercera edición. México DF: Masson Doyma S. A.; 2003.
Mehlhorn H. Encyclopedia of parasitology. Third edition. New York: Springer. 2008.
Marra NM, Chiuso-Minicucci F, Machado GC, Zorzella-Pezavento SF, França TG, Ishikawa LL, et al. Migratory route of Strongyloides venezuelensis in Lewis rats: Comparison of histological analyses and PCR. Exp Parasitol. 2011;127:334-9. https://doi.org/10.1016/j.exppara.2010.08.006
Gonçalves ALR, Silva CV, Ueta MT, Costa-Cruz JM. Antigen, antibody and immune complex detection in serum samples from rats experimentally infected with Strongyloides venezuelensis. Exp Parasitol. 2012;130:205-8. https://doi.org/10.1016/j.exppara.2012.01.007
Paula FM, Sitta RB, Malta FM, Gottardi M, Corral MA, Gryschek RCB, et al. Parasitological and molecular diagnosis in experimental Strongyloides venezuelensis infection. Rev Inst Med Trop São Paulo. 2013;55:141-3. https://doi.org/10.1590/S0036-46652013000200015
Vieira FM, Lima SS, Bessa EC. Morfologia e biometria de ovos e larvas de Strongyloides sp. grassi, 1879 (Rhabditoidea: Strongyloididae) parasito gastrointestinal de Hydrochaeris hydrochaeris (Linnaeus, 1766) (Rodentia: Hydrochaeridae), no Município de Juiz de Fora, Minas Gerais. Rev Bras Parasitol Vet. 2006;15:7-12.
El-Malky M, Maruyama H, Hirabayashi Y, Shimada S, Yoshida A, Amano T, et al. Intraepithelial infiltration of eosinophils and their contribution to the elimination of adult intestinal nematode, Strongyloides venezuelensis in mice. Parasitol Int. 2003;52:71-9. https://doi.org/10.1016/s1383-5769(02)00086-7
El-Malky MA, Maruyama H, Al-Harthi SA, El-Beshbishi SN, Ohta N. The role of B-cells in immunity against adult Strongyloides venezuelensis. Parasit Vectors. 2013;6:148. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-148
Sasaki Y, Yoshimoto T, Maruyama H, Tegoshi T, Ohta N, Arizono N, et al. IL-18 with IL-2 protects against Strongyloides venezuelensis infection by activating mucosal mast celldependent type 2 innate immunity. J Exp Med. 2005;202:607-16. https://doi.org/10.1084/jem.20042202
Takamure A. Migration route of Strongyloides venezuelensis in rodents. Int J Parasitol. 1995;25:907-11. https://doi.org/10.1016/0020-7519(95)00014-s
Wynn TA. IL-13 effector functions. Annu Rev Immunol. 2003;21:425-56. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.21.120601.141142
Gabriel JA, Rueda MM, Canales M, Sánchez A. Utilidad del método Kato-Katz para diagnóstico de uncinarias: experiencia en una zona rural de Honduras, 2011. Rev Med Hondur. 2012;80:96-101.
Easton AV, Oliveira RG, Walker M, O’Connell EM, Njenga SM, Mwandawiro ChS, et al. Sources of variability in the measurement of Ascaris lumbricoides infection intensity by Kato-Katz and qPCR. Parasit Vectors. 2017;10:256. https://doi.org/10.1186/s13071-017-2164-y
Gonçalves ALR, Silva CV, Carvalho EFG, Ueta MT, Costa-Cruz JM. Transmammary transmission of strongyloidiasis in immunosuppressed rats. Neotrop Helminthol. 2013;7:195-200. https://doi.org/10.2307/3285443
Algunos artículos similares:
- Sunny Sánchez, Dolores Zambrano, Maylen García, César Bedoya, Carlos Fernández, María Teresa Illnait-Zaragozí, Caracterización molecular de los aislamientos de Cryptococcus neoformans de pacientes con HIV, Guayaquil, Ecuador , Biomédica: Vol. 37 Núm. 3 (2017)
- Patricia Jiménez, Karina Calvopiña, Diana Herrera, Carlos Rojas, Laura Pérez-Lago, Marcelo Grijalva, Remedios Guna, Darío García-de Viedma, Detección de Mycobacterium tuberculosis, linaje Beijing, en Ecuador , Biomédica: Vol. 37 Núm. 2 (2017)
- Jazzmín Arrivillaga-Henríquez, Sandra Enríquez, Vanessa Romero, Gustavo Echeverría, Jorge Pérez-Barrera, Ana Poveda, Juan-Carlos Navarro, Alon Warburg, Washington Benítez, Aspectos ecoepidemiológicos, detección natural e identificación molecular de Leishmania spp. en Lutzomyia reburra, Lutzomyia barrettoi majuscula y Lutzomyia trapidoi , Biomédica: Vol. 37 Núm. Sup. 2 (2017): Suplemento 2, Entomología médica, 2017
- Giovani Marcelo Ramón, Rodolfo Pérez, Pablo Jarrín, Francisco Campos-Rivadeneira y Roberto Levi-Castillo: sus vidas y contribuciones al estudio de los mosquitos (Diptera: Culicidae) en Ecuador , Biomédica: Vol. 39 Núm. Sp. 1 (2019): Suplemento 1, Microbiología médica, mayo
- Luis Solórzano-Alava, Francisco Sánchez-Amador, Talia Valverde, Angiostrongylus (Parastrongylus) cantonensis en huéspedes intermediarios y definitivos en Ecuador, 2014-2017 , Biomédica: Vol. 39 Núm. 2 (2019)
- Nohora Marcela Mendoza, César Eduardo Díaz, Yim Yan Wong, Adriana Estefanía Echeverría, Doris Grimaneza Guale, Rosa Haydeé Delgado, José Mauricio Muñoz, Luis Fernando Solórzano, Marcelo Eduardo Andrade, Rosa Alba Quintero, Belinda Regina Palacios, Saida Marlene Ortega, Wilson Benigno Cuero, John Richard Castillo, Evaluación de la calidad del diagnóstico de malaria en la red local de laboratorios y en los laboratorios intermedios en el contexto de la eliminación de la enfermedad en Ecuador , Biomédica: Vol. 39 Núm. Supl. 2 (2019): Enfermedades transmisibles en el trópico, agosto
- Ángela Bracho , María Leonela Guerrero, Gema Molina , Zulbey Rivero, Miguel Arteaga , Prevalencia de malaria gestacional en Ecuador , Biomédica: Vol. 42 Núm. 1 (2022)
- Manuel Calvopiña, Elías Guamán-Charco, Karen Ramírez, Felipe Dávalos, Paola Chiliquinga, Sergio Villa-Soxo, René Oña-Vistin, Daniel Romero-Álvarez, Epidemiología y características clínicas de las mordeduras de serpientes venenosas en el norte de la Amazonía del Ecuador (2017-2021) , Biomédica: Vol. 43 Núm. 1 (2023)
- Héctor Chiang-Wong, Patricio González-Saldaña, Uso de romiplostim en trombocitopenia inmunitaria: experiencia en Cuenca (Ecuador) , Biomédica: Vol. 44 Núm. Sp. 1 (2024): Enfermedades crónicas no transmisibles
| Estadísticas de artículo | |
|---|---|
| Vistas de resúmenes | |
| Vistas de PDF | |
| Descargas de PDF | |
| Vistas de HTML | |
| Otras vistas | |
Datos de los fondos
-
Secretaría Nacional de Ciencia, Tecnología e Innovación,Secretaría de Educación Superior, Ciencia, Tecnología e Innovación
Números de la subvención 20130372, 2013
